COPOASU

Theobroma grandiflorum (Willd. Ex Spreng). Schum.

Origen :

Amazonía oriental.

Distribución :

Cuanca amazónica, América Central y el Caribe.

Descripción :

Arbol de hasta 18 m de altura.

Adaptación :

Clima tropical húmedo y subhúmedo, buen drenaje, tolera sombra.

Formas de utilización :

Pulpa para jugos, refrescos, helados, dulces, compotas, licor y yogurt.

Semilla para elaborar polvo o tabletas similares al cacao, pero color blanco, y para obtener manteca.

I. DESCRIPCION Y HABITAT

Nombre científico y familia:

Theobroma grandiflorum (Willd. ex Spreng). Schum. STERCULIACEAE.

Nombre común:

Sinónimos aceptados:

Bubroma grandiflorum Willd ex Spreng, Theobroma macrantha Bernoulli.

Descripción botánica:

Arbol del bosque tropical húmedo que puede alcanzar hasta 18 m de altura,presentando tallo con cáscara marrón oscuro y ramificaciones tricotómicas, con las ramas superiores ascendentes y las inferiores horizontales. El crecimiento de la parte aérea obedece a un patrón bien definido. El tallo crece en etapas de 1,0 a 1,5 m, emitiendo ramas plagiotrópicas trifurcadas al final de cada período.

Las hojas son simples, subcoriádas, con 25 a 35 cm de longitud por 6 a10 cm de ancho; presentan lámina oblonga u oblongo-ovalada, glabra, verde en el haz y verde claro o rosado pálido en el envés, con un revestimiento delicado de pilosidad. Las inflorescencias estáan localizadas en las ramas plagiotrópicas, cimulosas, de tre a cinco flores o más; pedúnculos con tres bractéolas; cáliz con cinco sépalos espesos, parcialmente unidos o libres; corola con cinco pétalos, presentando cada una forma de túnica en la base, con la parte superior laminar de color rojo oscuro; cinco estambres localizados en el interior de la túnica; ovario pentagonal, obovado, con cinco lóculos multiovalados.

El fruto presenta características de drupa y de baya (baya drupácea), de forma elipsoide u oblonga, variando de 12 a 25 cm de longitud y de 10 a 12 cm de diámetro, su peso fluctúa entre 0,5 y 4,0 kg, promedio 1,5 kg. El epicarpio es rígido y leñoso, con epidermis verde, recubierto por una capa de coloración ferruginosa, pulverulento, que se desprende cuando se manipula; meso-endocarpio de coloración blanco amarillento, con 7 mm de espesor. El fruto contiene entre 20 y 50 sencillas, promedio 32, superpuestas en hileras verticales en tomo a la placenta, envueltas por abundante pulpa blanco amarillenta, acidulada y con aroma característico.

Existen plantas que producen frutos sin semillas, pero, la acidez de la pulpa es menor que en los frutos con semilla.

Origen:

Especie arbórea, nativa de la Amazonia oriental. Se encuentra silvestre en la parte sudoeste del estado de Pará, y en la preamazonia hacia el estado de Maranhão, Brasil. La distribución espontánea de esta especie incluye áreas de tierras firmes y de terrazas aluviales ("varzeas") altas, particularmente en las regiones del río ltapecuru medio, río Tocantins bajo, río Xingu bajo, áreas de bosques próximos a los ríos Turiagu y Pindare y en bosques vírgenes bajos entre Altamira e ltaituba y en el río Anapú alto. Debido a que es un cultivo precolombino, es difícil separar con precisión las áreas de ocurrencia natural de aquellas donde está presente por acción antrópica.

Ecología y adaptación:

El copoasú tiene como habitat natural el bosque tropical húmedo de las tierras altas no inundables, siendo sombreado parcialmente por los árboles de mayor tamaño. En Brasil, se cultiva desde el estado de Sáo Paulo, por el sur, hasta Roraima, por el norte. Otros países donde se cultiva ocasionalmente son Ecuador, Guyana, Martinica, Costa Rica, Sáo Tomé, Trinidad Tobago, Ghana, Venezuela y Colombia.

Las condiciones climáticas favorables para su desarrollo son bastante variables. En las zonas de ocurrencia natural, la temperatura media varia entre 21,6 a 27,5'C, la humedad relativa del aire entre 64 y 93% y las precipitaciones pluviales anuales pueden estar entre 1.900y 3,100 mm. Se ha observado buen desempeño de la especie en regiones con clima sub húmedo y super húmedo, con lluvias anuales superiores a 1,800 mm, bien distribuidas, y temperatura media anual superior a 22'C.

II. LA PLANTA Y SU CULTIVO

Métodos de propagación:

La propagación puede ser efectuada por semilla o por vía asexual. Estos métodos no deben ser considerados alternativos, puesto que tienen objetivos diferentes. La propagación vegetativa es recomendada cuando la finalidad es propagar plantas con características altamente deseables, como tamaño de fruto, rendimiento de pulpa, productividad, porte de planta, o la propagación de plantas sin semilla.

En las poblaciones espontáneas o en las sembradas por el hombre, es común encontrar plantas de alta y de baja productividad. Las serjaillas deben provenir de plantas con buena producción, porte bajo, frutos grandes y libres de plagas y enfermedades. Las semillas de copoasú originadas en un mismo fruto varían mucho en tamaño, peso, forma y contenido de humedad. Las más grandes y más pesadas son las que, generalmente, producen plántulas más vigorosas, debiendo descartarse las semillas pequeñas y livianas. Este proceso de selección se debe efectuar después de completar la eliminación de la pulpa que envuelve las semillas. El promedio de semillas despulpadas y preparadas es 205 por kg.

Las semillas destinadas a la producción de plántulas deben ser beneficiadas manualmente,con una tijera, pues de este modo es posible retirar cuidadosamente la pulpa que las envuelve. Las despulpadoras mecánicas producen daños y dejan mayor cantidad de pulpa envolviendo las semillas, lo que puede acelerar la fermentación y producir la muerte del embrión. El uso de despulpadoras mecánicas implica una selección más rigurosa de las semillas, eliminando aquellas que presentan fermentación en su superficie, pues, con frecuencia dan origen a plantas anormales.

El proceso de beneficio es completado refregando las semillas con arena blanca y lavado posterior para eliminar los residuos de pulpa.

Estas semillas pueden ser sembradas inmediatamente o sometidas a oreo a la sombra, en lugar bien aireado, por 24 horas.

Por presentar comportamiento recalcitrante, las semillas pierden rápidamente el poder germinativo, especialmente, cuando son expuestas a baja humedad relativa del aire o a bajas temperaturas. La viabilidad se puede conservar por 10 a 12 días, manteniendo las semillas dentro del fruto. Las semillas despulpadas pueden ser conservadas por seis a ocho días, cuando son estratificadas en aserrín húmedo, vermiculita o polvo de carbón. En este sistema, inician el proceso de germinación, siendo común que presenten la radícula externamente visible al final de este período.

El proceso germinativo es rápido y uniforme, iniciándose la emergencia de las plántulas a los 13 días después de la siembra y estabilizándose al final de 25 días, cuando el porcentaje es superior a 90% (Figura 12). La germinación es de tipo hipogea, con la temperatura ideal en el rango de 25 a 30'C; temperaturas menores a 15'C producen muerte de las semillas.

Figura 12

La siembra puede ser efectuada por dos métodos. En el primero, las semillas son sembradas en germinadores y, al estado de plántulas, son repicadas en bolsas de plástico. En el otro método, la siembra es efectuada con semillas pregerminadas y consta de dos etapas:

1º) Después de seleccionar las semillas, éstas son sembradas en un sustrato de aserrín descompuesto, en un lugar protegido de la radiación solar directa, donde permanecen hasta que haya evidencia del inicio de emergencia de la radícula, caracterizado por la aparición de un punto blanco en la porción basal de la semilla, lo que generalmente ocurre a los seis a ocho días después de la siembra.

2º) Al surgir la radícula, las semillas pregerminadas son transferidas a bolsas plástico y sembradas a 1 cm debajo del nivel del sustrato.

El sustrato puede estar constituido por una mezcla de tierra de bosque y estiércol de corral, en proporción volumétrica I:I. Un buen crecimiento de las plántulas en el vivero se consigue con la aplicación de 10 g de fertilizante por planta, conteniendo 6% de N, 20% de P205, 6% K20, 2,0% calcio, I,O% magnesio, 1,5% azufre, 500 ppm zinc y 200 ppm boro. El primer abonamiento debe ser efectuado dos meses después de la siembra y repetido cada dos meses, hasta que la planta esté en condiciones de ser llevada a campo definitivo.

En la propagación vegetativa, los injertos que pueden ser utilizados son el de yema o escudo y el de púa o vara terminal. El portainjerto es el propio copoasú, formado a partir de semilla y debe tener alrededor de 1 cm de diámetro para el injerto.

En el injerto de yema, se deben eliminar las hojas de las ramas de donde se tomarán las yemas, diez días antes de realizar el injerto. Esta práctica facilita la extracción del escudo, así como evita que el pedazo de vaina de la hoja permanezca adherida al escudo, lo que podría causar pudrición de la yema antes de su prendimiento. El retiro de la cinta plástica que envuelve el injerto sólo debe efectuarse 21 a 30 días después.

En el injerto en púa ("garfagem")se deben utilizar ápices de ramas de crecimiento vertical y que presenten hojas completamente maduras. Las hojas de la vara yemera deben ser retiradas, excepto las dos últimas, situadas en el ápice de la vara, que deben ser cortadas parcialmente, de modo que sean conservados 5,0 cm del limbo. Estas hojas servirán como indicadores del prendimiento y, por lo tanto, deben mantener el color verde hasta el décimo quinto día después de injertar. La capa que mantiene la humedad del injerto puede ser retirada solamente después que salgan los brotes en la vara injertada. Las plantas injertadas por este método deben mantenerse obligatoriamente bajo sombra densa y no se deben eliminar las hojas ubicadas debajo del punto de inserción del injerto.

La mayoría de los brotes del injerto son plagiotrópicos (crecimiento lateral). Por este motivo, las plantas necesitan tutores y la poda de los ápices terminales, para que haya una formación adecuada de la copa. En ambos métodos de injertación se debe eliminar todos los brotes que surjan en el portainjerto.

Prácticas culturales y producción:

El copoasú requiere de sombra en la fase de planta joven (durante el primer año), pero cuando adulta, la planta soporta sombra parcial o puede cultivarse a pleno sol. Esta característica posibilita su cultivo en áreas de sotobosque o en asociación con otras especies arbóreas. El cultivo en sotobosque reduce costos en la preparación del área, pudiendo aprovecharse los bosques secundarios ("purmas", "capoeiras") abandonados, con altura alrededor de 6,0 m, o aquellas áreas ocupadas anteriormente con cultivos anuales.

La densidad de siembra en sotobosque está condicionada a la fertilidad del suelo, abonamiento a aplicar y forma de conducción de las plantas. Para plantas obtenidas por vía sexual, sin conducción, en suelos de buena fertilidad y con buena fertilización, se recomienda sembrar a 8,0 m en triángulo equilátero (179 plantas/ha). Cuando se utilizan plantas obtenidas por injerto o de pie franco, conducidas durante el desarrollo, en suelos de baja fertilidad y con baja dosis de abonamiento, se recomienda la siembra a 6,0 m, en triángulo equilátero (319 plantas/ha).

La siembra se efectúa en hoyos de 40 cm, en las tres dimensiones: largo, ancho y profundidad. Se recomienda aplicar 10 litros de estiércol de corral o cinco de aves, además de 100 g de superfosfato triple.

Las prácticas culturales que se acostumbran son los deshierbos y coroneos, así como la poda de conducción. Esta última permite mantener las plantas con porte bajo, dejando, como máximo, dos trifurcaciones en el tronco, eliminándose periódicamente los brotes nuevos. Los terminales de las trifurcaciones también deben ser podados para inducir los brotes laterales a fin de que la arquitectura de la planta adquiera la forma de taza. La poda de limpieza que elimina las ramas atacadas por escoba de brujas, se ejecuta en los meses de mayor intensidad pluviométrica, ya que en esa época no hay formación de basidiocarpos.

Para las plantas en crecimiento se recomienda la aplicación de la mezcla 10-28-20 de NPK, tres veces al año, utilizando para cada aplicación 70, 100 y 150 g, en el primer, segundo y tercer año, respectivamente. Las . plantas en plena producción, tienen buen rendimiento con tres aplicaciones al año de 200 g de la mezcla anteriormente mencionada y una sola aplicación de 0,5 kg de harina de hueso.

La producción aumenta gradualmente con la edad de la planta, estabilizándose entre los ocho y doce años, pudiendo alcanzar hasta 40 frutos por planta. La productividad promedio de 10 años en plantaciones ubicadas en suelos de baja fertilidad, está alrededor de 12 frutos por planta, distribuyéndose la producción de octubre a mayo, con picos en los meses de diciembre, enero y febrero (Figura 13).

Figura 13

Principales plagas y enfermedades.

Control:

En la fase inicial del crecimiento o, mientras están en vivero, las plantas pueden ser atacadas por Costalimaita ferruginea, uncoleóptero de color castaño que causa daños en las hojas, y por la broca de las plántulas (Xyleborusferrugineus) que ataca el tallo, causando la muerte de la planta desde el lugar donde penetra hasta el ápice. El control de la primera plaga es efectuado con insecticida de contacto y, de la segunda, con insecticidas sistémicos, siendo también recomendable la eliminación de las plántulas atacadas. Para evitar la incidencia del ataque de la broca de las plántulas, los viveros deben ser instalados en lugares donde no exista en la proximidad plantas de maqaranduba (Manilkara huberí), principal hospedero de este coleóptero.

Los insectos que más frecuentemente atacan las plantas adultas son el pulgón negro (Toxopteracitridus), la lagarta verde (Macrosomatipulata) y las cigarras, que son controlados con pulverizaciones de insecticidas fosforados a la concentración de I%. La principal plaga que ataca los frutos es la broca (Conotrachelus humeropticus), coleóptero que se alimenta de la parte interna del fruto, causando pudrición de la pulpa.

Entre las enfermedades, la escoba de brujas, causada por el hongo Crinipelis perniciosa, es sin lugar a dudas el mayor problema del copoasú. La raza de este hongo aislada en el copoasú, tiene baja virulencia en el cacao.

El hongo produce aumento del diámetro de la parte afectada, supercrecimiento y superbrotamiento de las ramas que se encorvan, secan y mueren, produciendo basidiocarpos que darán origen a nuevas infecciones. Cuando el ataque alcanza a las flores y frutos, estos no se desarrollan y se secan. El control es efectuado eliminando las ramas y frutos atacados. Esta operación es efectuada cortando las ramas 15 a 20 cm debajo del área infectada y debe realizarse en los meses de mayor intensidad de lluvias, siendo conveniente repasar las plantas tres a cuatro meses después de la poda de limpieza. La aplicación de fungicidas cúpricos al 0,4%, disminuye la incidencia de la enfermedad, especialmente, cuando es aplicado al final del período lluvioso.

El hongo Lasíodiplodiatheobromae (Botryodiplodia theobromae), produce pudrición interna de los frutos, causando oscurecimiento total o parcial de la pulpa ("mal de fagáo"). Generalmente, la penetración del hongo se produce a consecuencia de heridas producidas por insectos, por lo que el control de estos con insecticidas de contacto, disminuye la incidencia de la enfermedad.

La antracnosis (Collethotricum gloeosporioides) produce manchas cloróticas de tamaño variable, con secamiento progresivo de las hojas atacadas. Se controla con pulverizaciones quincenales de fungicidas cúpricos al 0,3%. Otra enfermedad de la hoja es la mancha de pomopsis (Phomopsis sp.), cuya incidencia es mayor en el período lluvioso y se caracteriza por manchas ferruginosas circulares en las hojas. Provoca arrogamiento de los tejidos que caen o quedan presos en un punto único. Los frutos y ramas también pueden ser atacados. El control es efectuado a través de pulverizaciones con Benomyl al O,I%, mezclado con un insecticida fosforado, en la misma concentración.

La pudrición de las raíces, cuyo síntoma es la aparición de coloración bronceada en el follaje, con secamiento posterior de toda la planta, es causada por el hongo Rigidoporus lignosus. El ataque ocurre en las raíces, donde se observan fácilmente los rizomorfos, tanto en la superficie como en la parte interna de éstas. Las plantas atacadas deben ser erradicadas, aplicando al lugar donde estaban sembradas, un litro de la suspensión de PCNB al 0,1%. Las plantas cercanas también deben recibir el mismo tratamiento.

La mancha parda, cuyo agente etiológico es el Cercospora bertholletia, provoca puntuaciones de color amarillento en las dos caras de las hojas; luego se toman pardo amarillentas a pardo oscuras, circundadas por un halo amarillo. Se controla con fungicidas cúpricos al 0,3%.

Tecnología de cosecha y poscosecha:

En la zona de Belém, Pará, la zafra se inicia en el mes de octubre, prolongándose hasta mayo del año siguiente. La colecta de los frutos, directamente de la planta, es difícil de ser efectuada, pues no hay indicativos externos que posibiliten caracterizar los estados de maduración. Los frutos cosechados inmaduros no completan su maduración y presentan pulpa más ácida, siendo más difícil la extracción, principalmente en despulpadoras mecánicas. Por este motivo, los frutos se cosechan generalmente del suelo, después que se desprenden de la planta, lo que sucede con mayor frecuencia durante la noche.

El tratamiento de poscosecha solamente incluye la limpieza superficial de los frutos, para eliminar los residuos de tierra y restos vegetales adheridos. La extracción de la pulpa, para comercializar al natural, debe realizarse en el plazo máximo de cinco días después de la cosecha, para no comprometer su calidad.

III. PERSPECTIVAS DE MEJORAMIENTO DEL CULTIVO

Diversidad genética:

La mayor fuente de diversidad genética se observa en el estado de Pará, donde ocurren frutos de diferentes formas, tamaños, rendimiento de pulpa, espesor de cáscara, acidez, tamaño y forma de las semillas. Algunas poblaciones presentan mayor frecuencia de frutos de características específicas, como frutos de tamaño grande, espesor de cáscara y forma del fruto. Por ejemplo, en el río Anapú Alto predominan los frutos con peso superior a 3,0 kg.

Un tipo bien definido, localizado en el municipio de Mámeta, Pará, presenta frutos sin semillas, con mayor rendimiento de pulpa y menor acidez. Pero, este tipo presenta bajo cuajado de frutos cuando es cultivado aislado de plantas que producen frutos con semilla. La baja productividad de las plantas originadas en este gerinoplasma limita su siembra en plantaciones comerciales.

Disponibilidad de recursos genéticos:

El aumento del área cultivada en la Amazonia despertó el interés de los investigadores para colectar germoplasma. Estas colectas se han llevado a cabo tanto en áreas cultivadas, como en áreas de ocurrencia natural. En la actualidad, prácticamente todas las instituciones de investigación ubicadas en la Amazonia brasileña tienen colecciones o bancos de germoplasma. El CPATU/EMBRAPA dispone de 46 entradas que están siendo probados desde hace nueve años, principalmente por su resistencia a la escoba de brujas. De estas entradas, hasta el momento 15 no han mostrado síntomas de la enfermedad.

En el Estado de Pará, Brasil, se está cultivando una nueva variedad de copoasú que no tiene semillas o, por lo mucho, son semillas atrofiadas no desarrolladas. Esta variedad tiene mayor rendimiento de pulpa, pero el sabor no es tan intenso como en la variedad con semilla.

Prioridades de investigación:

Todas las instituciones de investigación ubicadas en la Amazonia brasileña están investigando de una manera u otra, para el desarrollo del cultivo de copoasú. El mejoramiento genético es la línea de investigación prioritaria, con énfasis en la colección de germoplasma, selección de plantas más productivas, resistencia a enfermedades, porte bajo y alto rendimiento de pulpa.

La variabilidad para buscar productividad y resistencia a la escoba de brujas, aspectos altamente deseables para la domesticación de la especie, es la principal meta de las instituciones de investigación localizadas en la Amazonia Brasileña.

IV. UTILIZACION Y COMERCIALIZACION

Formas de utilización:

La pulpa y las semillas son las partes del fruto que se utilizan. La primera se emplea en la preparación doméstica de jugos, refrescos, cremas, compotas, dulces, helados, bizcochos y yogurt. Industrialmente, la pulpa es utilizada en la fabricación de jugos, helados, compotas, dulces, licores y yogurt.

Las semillas se pueden utilizar para la elaboración de "cupulate", un producto con características nutritivas y organolépticas similares al chocolate. El "cupulate" puede ser formulado tanto en polvo como en tabletas. En el caso de la formulación en polvo, se obtiene como subproducto la manteca de copoasú. Con una tonelada de semillas frescas es posible obtener 160 kg de cupulate en polvo y 135 kg de manteca; o también, 348 kg de cupulate medio amargo, en la forma de tabletas y 65 kg en polvo.

En el caso de producir cupulate con leche, el rendimiento es mayor, obteniéndose con la misma cantidad de semilla, 389 kg de tabletas y 90 kg en polvo. En la elaboración de cupulate blanco, que es preparado con manteca de cupuasú, azúcar y leche en polvo, por cada tonelada de semilla fresca se obtiene 320 kg de tabletas y 160 kg de polvo.

Composición química y valor nutricional: El rendimiento de pulpa varía de acuerdo con el tamaño del fruto, genotipo, localidad de producción y período de cosecha. En promedio, los frutos presentan 43% de cáscara, 38% de pulpa, 17% de semilla y 2% de placenta. Las características de la pulpa, que es la parte del fruto con mayor valor económico se presenta en el Cuadro 19.

Cuadro 19

Valor nutricional de 100 g de pulpa de copoasú.

La acidez natural de la pulpa, así como el elevado nivel de pectina, son características importantes que favorecen la fabricación de néctares, gelatinas, compotas y dulces. Esta alta acidez natural posibilita, también, la conservación del néctar por mayor tiempo durante el almacenamiento.

La pulpa es bastante pobre como fuente de proteína y de grasas, presentando valores de 1,92 y 0,48 %, respectivamente. El valor nutricional de las semillas se presenta en el Cuadro 20.

Cuadro 20

Valor nutricional de la semilla de copoasú (% en base a materia seca)

Los ácidos esteárico, oleico, araquídico y linolénico son los principales constituyentes de las grasas de la semilla.

Aspectos de agroindustrialización a pequeña escala:

El beneficiamiento en pequeña escala consiste en la extracción de la pulpa que envuelve las semillas, pudiendo ser efectuado el proceso manualmente o con despulpadoras mecánicas.

El proceso manual es efectuado con el auxilio de tijeras comunes, cortándose la pulpa que se encuentra adherida a la semilla. Este proceso es lento, pero proporciona un producto de mejor calidad, en vista de que no hay necesidad de añadir agua ni quedan fragmentos de semillas. En cambio, en el proceso mecanizado, las semillas con pulpa son colocadas en maquinas despulpadoras, agregando pequeñas cantidades de agua; el producto así obtenido tiene menor cotización en el mercado.

La pulpa es acondicionada en sacos de polietileno y congelada a menos 18'C, lo que posibilita su conservación hasta doce meses, sin alteración significativa en la calidad.

Importancia económica potencial y comercialización:

En la Amazonia brasileña los frutos son comercializados durante el período de cosecha y generalmente al natural. Después de ese período, la pulpa congelada es la principal forma de comercialización.

En otras regiones de Brasil se está desarrollando un mercado creciente de pulpa congelada, especialmente, para la elaboración de jugos y helados. Las exportaciones fuera de Brasil son muy limitadas, pero se está promoviendo el producto para abrir una ventana de mercado.

V.FUENTES DE INFORMACION

Literatura:

Barbosa, W. C., R. F. R. de Nazaré e l. Nagata. 1978. Estudos físicos e químicos dos frutos: bacuri (Platonia insignis), cupuagu (Theobroma grandiflorum) y murici (Byrsonima crassifolia). Anais do Congresso Brasileiro de Fruticultura. 5: 797-808.

Brako, L. y J.L. Zaruchi. 1993. Catálogo de las Angiospermas y Gimnospermas del Perú. Missouri Botanical Garden. St. Louis, Missouri, EE.UU. 1 286 p.

Calzavara, B. B. G. 1984. Fruticultura tropical: o Cupuaguzeiro; cultivo, benéficiamíento e utilização do fruto. Belém: EMBRAPA-CPATU. (EMBRAPA-CPATU. Documento, 32).

Calvacante, R B. 1991. Frutas comestíveis da Amaz6nia, 5a. ed. Belém. Edi@óes CEJUR CNPq/Museu Paraense Emílio Goeldi. 279 p.

Diniz, T. D. A. S., T. X. Bastos, l. A. Rodrígues et al. 1984. Condições climáticas cm áreas de ocorrencia natural e de cultivo de guaraná, cupualu, bacuri e castanha-do-brasil. Belém:

EMBRAPA-CPATU. 4p. (EMBRAPA-CPATU. Pesquisa em Andamento, 133).

García, L. C. 1994. Intluencia da temperatura na germinação de sementes e no vigor de plántulas de cupuaçuzeiro (Theobrotiia grandifloruin (Willd. ex-Spreng) Schum). Pesquisa Agropecuaria Brasileira 29 (7): 1145-1150.

Hühn, S., J. de B. Lourenco, l. 0. D. Moura Carvalho, et al. logurte de ]cite de búfala com sabores de frutas da Amazônia. Belém: EMBRAPA-CPATU. 13 p. (EMBRAPACPATU. Circular Técnica, 23).

Müller, C. H., B. B. G. Calzavara, 0. Kahwage, et al. 1986. Enxertia de ponteira cm cupuaçuzeiro (Theobrotiiagrandifloruíii Schum.). In: l' Simposio do Trópico Umido, Belém. Anais. p. 237-243.

Müller., C. H. et al. 198 l. Manual práctico do cultivo de fruteiras. Belém: EMBRAPACPATU. 28p. (EMBRAPA-CPATU. Miscelanea, 9).

Moraes, V.H. de F. et al. 1994. Native fruit species of economic potential from the brazilian Amazon. Ancyew Bot. 68:47-52.

Nazaré, R. F. R., W. C. Barbosa y R. M. F. Viegas. 1990. Processamento das sementes de cupuagu para obtençáo de cupulate.

Belém. EMBRAPA-CPATU. 38 p. (EMBRAPA-CPATU. Boletim de Pesquisa, 108).

Venturieri, G. A. 1993. Cupuaçu: a especie, sua cultura, usos o processamento. Belém. Clube do Cupu. 108 p.

CUTITE GRANDE

Pouteria macrocarpa (Huber) Baehni.

Origen :

Amazonía Oriental.

Distribución :

Cuenca amazónica.

Descripción :

Arbol de hasta 30 m en bosque y 6 a 10 m si es cultivado.

Adaptación :

Clima tropical húmedo y sub húmedo, suelos con buen drenaje, tolera períodos secos.

Formas de utilización :

Pulpa de fruta para consumo fresco, helados, jugos, harina y mermeladas.

l. DESCRIPCION Y HABITAT

Nombre científico y familia:

Pouteria macrocarpa (Huber) Baehni. SAPOTACEAE.

Nombre común:

"Cutite grande", "níspero montanera", "purguiuo negro" (espaiíol), "cutite grande" (portugués).

Sinónimos aceptados:

Lúcuma macrocarpa Huber y Radlkoferella macrocarpa (Huber) Aubr.

Descripción botánica:

Arbol pequeño, de 6 a 10 m cuando se cultiva, pero que puede alcanzar hasta 30 m de altura en los bosques. El tronco y las ramas son de color similar al de la guayaba (Psidium guajava L.) y pierden la corteza de manera similar a las mirtáceas. Las hojas son alternas, simples, lanceolado-obovadas, 7 a 25 cm de longitud por 5 a 8 cm de ancho, con ápice agudo u obtuso.

La inflorescencia se presenta en fascículos de tres a diez flores nacidas entre las hojas o en las ramas que se han defoliado. Cáliz con cuatro a cinco sépalos, corola con cuatro a seis pétalos verdeados, ovario globoso con cinco lóculos unilobulados. El fruto es una baya globosa y voluminosa, cerca de 10 cm de diámetro, ápice con una punta obtusa, cáscara lisa color verde amarillo en el fruto maduro, pulpa compacta y amarilla.

Origen:

Parece ser originario de la zona costera de los estados de Pará y Maranhão, en el Brasil, donde se encuentra en mayor abundancia.

Ecología y adaptación:

Planta que crece principalmente en la Amazonia norte de Brasil, pero que puede adaptarse al resto de la Amazonia. Se observa principalmente en zonas con precipitaciones pluviales entre 2,000 y 3,000 mm por año, temperaturas medias anuales de 26'C e incluso mayores y suelos bien drenados.

II. LA PLANTA Y SU CULTIVO

Métodos de propagación:

La propagación es por semillas, cuyo número por fruto varía entre tres y diez, con una media de seis semillas. Estas son de tamaño grande, fluctuando el peso individual entre 8,3 y 19,1 g. En promedio, 1,000 semillas con alrededor de 43% de humedad pesan 12,260 g. Cuando son tomadas de frutos completamente maduros y sembradas inmediatamente después de la extracción presentan un alto poder germinativo, con un proceso rápido y uniforme. La emergencia de las plántulas se inicia 28 días después de la siembra y se estabiliza en el día 50 (Figura 14). La gernúnación es de tipo hipogea. Las sencillas no toleran el secado.

Posiblemente pueda efectuarse el injerto utilizando el método descrito para la lúcuma (P lucuma) y para la lucma o cutite, es decir, el injerto de yema termina] simple o, el de yema terminal en doble lengüeta. El injerto se realiza cuando las plantas tienen 25 a 30 cm de altura y un diámetro de 1 cm. En la lúcuma las yemas prendidas empiezan a desarrollar a los 30 días y las plantas están listas para llevarse a campo definitivo cuando se han formado y desarrollado completamente por lo menos seis hojas del injerto.

Prácticas culturales y producción:

El distanciamiento para sembrar las plantas en el campo definitivo podría estar alrededor de 6 a 7 m entre filas y entre plantas, pudiendo utilizarse cualquiera de los sistemas de plantación: cuadrado, rectangular, tresbolillo o quincunce. Las plantas injertadas deben iniciar la producción a los cuatro años del trasplante. El período de cosecha es muy corto, se inicia en junio y termina en julio.

Principales plagas y enfermedades.

Control:

No se conocen, dado que la especie no es cultivada en escala comercial y no ha sido estudiada.

Figura 14

Tecnología de cosecha y poscosecha:

En la zona de Belém, Brasil, la cosecha se produce en los meses de junio y julio. No se ha desarrollado tecnología para la cosecha y poscosecha en escala comercial, pero podría adaptarse la descrita para la lúcuma (P. lucuma).

III. PERSPECTIVAS DE MEJORAMIENTO DEL CULTIVO

Diversidad genética:

Esta especie presenta menor diversidad genética que la lucma o cutite.

Disponibilidad de recursos genéticos:

No se tiene recursos genéticos colectados o mejorados por instituciones. Las plantas se encuentran a nivel silvestre o como frutal de la huerta casera.

Prioridades de investigación:

Es mucho lo que queda por investigar para desarrollar el cultivo del cutite grande. Tal vez la principal actividad debería ser generar mayor conocinúento básico (requerimiento de clima y suelos, rendimiento, plagas y enfermedades). Un análisis comparativo preliminar con la lucma sugiere que esta última tiene mayor potencial como frutal en la Amazonia.

IV. UTILIZACION Y COMERCIALIZACION

Formas de utilización:

La fruta se utiliza para consumo fresco, pero a pesar de su aspecto grande y vistoso, es algo insípida y no tiene el mismo sabor que la lúcuma o cutite (pequeño).

Composición química y valor nutricional:

La composición centesimal del fruto es representada por 65% de pulpa, 11 % de cáscara y 24% de semillas. No se tiene referencia sobre su composición química y valor nutricional.

Aspectos de agroindustrialización a pequeña escala:

Una posibilidad de industrialización en pequeña escala sería la producción de harina de la fruta, la cual se puede utilizar para mezclarla con la harina de lúcuma o cutite, para atenuar el sabor tan fuerte de éste último. La tecnología a utilizar sería la descrita en el caso de la lúcuma.

Importancia económica potencial y comercialización:

Esta fruta no tiene actualmente un mercado definido de consumo, pero es posible desarrollar un mercado en la industria de helados, si se preparan harinas combinadas con lúcuma o si se usa la harina como base (por su escaso sabor) para darle sabor con otras frutas con sabor muy fuerte.

V.FUENTES DE INFORMACION

Literatura:

Cavalcante, P.V. 1991. Frutas comestiveis da Amazônia. 5a ed. Edições CEJUP, Museo Paraense E. Goeldi, Belém. 279 p.

GRANADILLA DE OLOR

Passiflora nitída H.B.K.

Origen :

Amazonia, pero no definido claramente.

Distribución :

Amazonia occidental, América Central y el Caribe.

Descripción :

Planta trepadora con tallo leñoso en la base y zarcillos en los ápices.

Adaptación :

Clima tropical con período seco bien definido, suelos ácidos con buen drenaje.

Formas de utilización :

Fruta fresca, en refrescos y helados.

Pulpa para preparar alimentos para infantes.

I. DESCRIPCION Y HABITAT

Nombre científico y familia:

Passiflora nitida H. B. k. PASSIFLORACEAE.

Nombre común:

"Granadilla", "granadilla de olor" (español), "maracuyá do rato" (portugués).

Descripción botánica:

Planta trepadora con tallo leñoso en la base y zarcillos en los ápices. Hojas en forma de corazón, de 8 a 20 cm de longitud. Flores de coloración roja, normalmente en número de dos por nudo, con olor dulce y agradable.

Fruto de 4 a 6 cm de diámetro, con epicarpio duro pero quebradizo, color amarillo a naranja, con cáscara gruesa y esponjosa. El arilo transparente y ligeramente perfumado.

Origen:

Nativo de las tierras bajas del trópico húmedo de América del Sur.

Ecología y adaptación:

P. nitida o granadilla de olor parece estar bien adaptada al clima tropical y los suelos ácidos de la Amazonia, pero en zonas con períodos secos bien definidos.

II. LA PLANTA Y SU CULTIVO

Métodos de propagación:

Se propaga por semilla. Las semillas se obtienen de frutos sanos provenientes de plantas sanas y robustas. Se separan las semillas de la pulpa colocándola en tamices de malla con diámetro menor a la semilla, en los que se adiciona cal para facilitar la separación. Se lavan con bastante agua y después se extienden sobre papel periódico, en la sombra y en un lugar bien ventilado. La semilla se puede germinar en cajas de madera o en bolsas conteniendo un sustrato a base de tierra, arena y materia orgánica.

Prácticas culturales y producción:

Las plantas son transplantadas al campo definitivo cuando tienen 30 0 40 cm, lo que ocurre a los 50 a 60 días de la siembra en almácigo. No se conoce el distanciamiento ni las prácticas agronómicas para la "granadilla de olor", pero se asume que éstas sean similares a las del maracuya. Es decir, se puede sembrar a 4 m entre hileras y 3 m entre plantas, utilizando soportes y alambre para las espalderas.

Después del trasplante, la planta debe ser conducida por un tutor que puede ser un poste de madera o un hilo de nylon amarrado hasta el tope del alambre. Es necesario remover los brotes laterales que surjan de la rama terminal de la planta. La rama terminal debe ser conducida hasta el alambre inferior donde se hace el despunte, dejando tres brotes, dos de los cuales se conducen lateralmente sobre el alambre y el tercero se lleva por el tutor hasta el alambre superior, allí efectúa un nuevo despunte para amarrar los nuevos brotes en los hilos del alambre.

La floración debe iniciarse entre los siete a ocho meses después del trasplante. No se conoce si la especie es autoestéril, como algunas otras pasifloras, en cuyo caso requerirá de flores de otras plantas para la polinización. La producción em`pieza cinco a ocho meses después de la floración. No se tiene datos de productividad por árbol, pero se asume que debe estar entre 5 y 8 kg/planta durante los primeros doce meses de cosecha.

Tecnología de cosecha y poscosecha:

Actualmente, la cosecha se realiza cuando los frutos han caído o manualmente. Las frutas se cosechan con pedúnculo, lo cual ayuda a mantener la coloración, facilita el manipuleo y disminuye el ataque de hongos y la pérdida de peso.

El cuidado de poscosecha incluye el uso de embalajes con 12 kg de capacidad máxima, evitando la compactación y el sobrepeso que producen hundimientos en el epicarpio, malogran la apariencia del fruto y facilitan el ataque de enfermedades.

La fruta puede soportar de siete a diez días para ser comercializada, dependiendo del grado de madurez a la cosecha. Se recomienda cosechar fruta por lo menos 75% de grado de maduración.

Para la exportación, la fruta puede ser tratada de manera similar a la "granadilla dulce" es decir, cosechada manualmente con tijeras, selección y clasificación, lavado y desinfección (en una mezcla de Tego 51 al 1% y Tiabenazol a 2,500 ppm). escurrido , secado con aire forzado con temperatura entre 30 y 40ºC, pre enfriado con aire, empacado en cajas de cartón con alvéolos de plástico y almacenado hasta por 45 días a 6 a 7ºC, con 90% de humedad relativa.

III. PERSPECTIVAS DE MEJORAMIENTO DEL CULTIVO

Diversidad genética:

No se conoce la variabilidad genética dentro de la especie. Sin embargo, existe una alta diversidad dentro del género, con especies de características similares y frutos muy parecidos en forma, color, textura y sabor.

Especies relacionadas son P. ligularis ("granadilla", "granadilla dulce", "parchita amarilla", sweet granadilla), mas adaptada al clima frío y posiblemente suelos de mejor fertilidad de los Andes. P. pinnatistipula ("tacso"), P. popenovii ("granadilla de quijos"), todas las cuales tienen sabor dulce y P. laurifolia (parchita"), P. edulis var flavicarpa ("maracuya"), P. mollissima ("curuba"), las que tienen sabor ácido.

P. ligularis se cultiva desde México hasta el Perú y Bolivia, entre 800 y 2,800 m de altitud; y P. popenovii se cultiva en la zona andina de Ecuador. P. ligularis es la especie que tiene más similitud con P. nitida.

Disponibilidad de recursos genéticos:

La Universidad Estatual Paulista, Facultad de Ciencias Agrícolas y Veterinarias, Campus de Jabotical (UNESP/FCAVJ) tiene recursos genéticos disponibles.

Prioridades de investigación:

No se conoce mucho de la especie, su botánica, fisiología, agronomñía e industrialización. Sin embargo, existe tecnología de especies afines como la "granadilla dulce" y el "maracuya", que puede ser utilizada como referencia para su validación.

IV. UTILIZACION Y COMERCIALIZACION

Formas de utilización:

La pulpa de la granadilla se consume directamente de la fruta. También se utiliza para preparar refrescos y helados. Tanto la "granadilla dulce" P. ligularis) como la "granadilla de olor" (P. nitida) son utilizados en alimentación de infantes con problemas estomacales.

Composición química y valor nutricional:

La composición de 100 g de pulpa, así como de 100 ml de jugo enlatado de "granadilla dulce" se presenta de manera referencial en el Cuadro 21.

Cuadro 21

Valor nutricional de 100 g de pulpa y de 100 ml de jugo enlatado de la granadilla dulce.

Aspectos de agroindustrialización a pequeña escala:

Se puede preparar néctar de granadilla aromática en pequeña escala, cortando la fruta lavada y separando la pulpa. Se mezcla los arilos y las semillas y se pasan por una malla de 0.69 mm, Esta mezcla se lleva con ázucar a 16 1 18 brix. 0.3% de acidez con ácido cítrico, diluida a 1:1, pasteurizada a 90ºC por cinco minutos y enlatada. Se debe ensayar temperatura menores de tratamiento térmico, para mantener mayor porcentaje del aroma.

Importancia económica potencial y comercialización:

Existe un mercado potencial para exportación de la fruta fresca y del jugo natural, especialmente en la industria de alimentos para bebé. El néctar se puede utilizar en la industria de refrescos, jugos y helados.

V. FUENTES DE INFORMACION

Literatura:

Calzada, J. 1980. 143 Frutales nativos. Lib. El Estudiante. Lima, Perú. 210 p.

Collazos, C., P. L. White., H.S. White et al. 1975. La composición de los alimentos peruanos. Instituto de Nutrición. Minist. de Salud. Lima. 35 p.

Leal, F. 1990. Granadilla. p: 322-327. n: S. Nagy et al. (eds.). Fruits of tropical and subtropical origin. Florida Science Source Inc. Lake Alfred, Florida.

Hoyos, E. A. y F. Gallo. 1987. Manejo precosecha, cosecha y postcosecha de granadilla y lulo. pp: 57-62. En: Producción, manejo y exportación de frutas tropicales de América latina. Federación Nacional de cafeteros de Colombia-Oficina Regional de la FAO para América Latina y el Caribe. Bogotá, Colombia.

GUABA

Inga edulis Mart.

Origen :

Amazonia, América Central y el Caribe.

Distribución :

América tropical y subtropical.

Descripción :

Arbol de 8 a 15 m de altura.

Adaptación :

Clima tropical y subtropical, suelos ácidos y alcalinos, hasta salinos, deficiencia hídrica.

Formas de utilización :

Pulpa de fruta fresca.

Madera para vivienda rural.

Planta-sombra para otras especies comerciales.

I. DESCRIPCION Y HABITAT

Nombre científico y familia:

Inga edulis Mart. FABACEAE (LEGUMINOSAE).

Nombre común:

Descripción botánica:

Es un árbol con 8 a 15 m de altura, tronco bajo, ramificando algunas veces casi desde la base, copa algo rala. Hojas compuestas pinnadas, raquis alado con cuatro a seis pares de foliolos subsésiles, elípticos u ovalados, los inferiores siempre más pequeños, base obtusa o redondeada, nervaduras laterales paralelas y presencia de glándulas interpeciolares. Inflorescencias terminales o subterminales agrupadas en las axilas de las hojas. Flores con cáliz verdoso y corola blanquecina, perfumadas, sésiles, agrupadas en el ápice del raquis.

El fruto es una vaina cilíndrica indehiscente, de color verde, multisurcado longitudinalmente y de largo variable, pudiendo llegar hasta un metro. Las semillas son negras de 3 cm de longitud, con un rango entre 1,4 y 4,5 cm, cubiertas por una pulpa (arilo) blanca, suave y azucarada.

Origen:

Planta que se encuentra silvestre en la Amazonia, América Central y las Indias Occidentales. Por la alta variabilidad existente y por el alto número de especies de inga observados, probablemente tenga como centro de distribución la región amazónica.

Ecología y adaptación:

Planta adaptada a las condiciones de climas tropicales y subtropicales, a climas con temperaturas medias iguales o superiores a 2OoC, siempre y cuando no existan heladas; adaptada a condiciones de precipitación entre 1,000 y más de 5,000 mm, suelos ácidos con pH 4,0 y alta saturación con aluminio y aun en condiciones de suelos de desierto que han sido incorporados en sistemas de riego. Se le encuentra distribuida en toda América del Sur tropical, desde el Océano Pacífico al Atlántico, aunque solamente en la región amazónica existe de manera natural. Otras especies del género Inga son cultivadas desde tiempo precolombino en la costa peruana.

II. LA PLANTA Y SU CULTIVO

Métodos de propagación:

La propagación es por semilla, la cual tiene más de 90% de poder germinativo; germina cuando la fruta ha completado su desarrollo y aún dentro de la misma vaina. En vivero la semilla es germinada en camas de almácigo con diferentes sustratos, por ejemplo tierra orgánica más arena gruesa en la proporción 2: 1, a distanciamientos de 4 por 4 cm ó 6 por 6 cm, dependiendo del tamaño de la semilla. La germinación se inicia a los tres días (si es que aún no se ha iniciado al cosechar la fruta) y alcanza el máximo en trece días. Las plántulas alcanzan 28 cm en 20 semanas.

Las semillas pierde viabilidad muy rápidamente y no toleran el secado, comportándose como semillas del grupo recalcitrante.

Prácticas culturales y producción:

Las plantas se llevan a campo definitivo cuando tienen entre 40 y 60 cm de altura. Para uso como sombra en plantaciones de café o cacao se utilizan distanciamientos entre 10 y 15 m, mientras que para cultivos en callejones se utiliza 4 m entre hilera y 0,5 m entre plantas. No se tiene experiencia para establecer plantaciones para el cultivo puro de guaba, pero se espera que el distanciamiento esté entre 6 y 8 m entre plantas y entre hileras. Las plantas alcanzan 2,0 a 4,5 m de altura en 12 meses, dependiendo de la fertilidad del suelo.

La fructificación se inicia a los tres a cuatro años del trasplante en L edulis y a los dos a tres años en L cetifera, aumentando hasta el año ocho a diez en que alcanza el máximo. La vida útil de una planta es estimada en 20 años. No se tiene datos de productividad por planta.

La fonología varía según la zona y según las especies. Las ingas fructifican en Brasil desde setiembre a junio; mientras que en Colombia y Perú se encuentran frutos entre febrero y diciembre.

En plantas con nueve años de edad, la producción de frutos está alrededor de 45 kg/árbol. En la región de Belém, Brasil y en muchas otras zonas de la Amazonia, la producción se distribuye en todos los meses del año, excepto enero, con mayor concentración en mayo, julio, octubre y noviembre (Figura 15).

Figura 15

Principales plagas y enfermedades.

Control:

No se han estudiado las plagas que atacan a la guaba, pese a que tiene problemas por ataque de varios insectos a los frutos. En el campo de frutales del CPATU/EMBRAPA en Belém, Brasil; se ha observado con cierta frecuencia el ataque de los frutos por un Chryosomelidae (no identificado a nivel de especie) y de Costalimaita ferruginea. Estos insectos no causan daños a las hojas. Asimismo, los loros y otras aves producen fuertes pérdidas por consumo de las frutas en el árbol.

No se tiene referencia de enfermedades que

ataquen a este fruta.

Tecnología de cosecha y poscosecha

La cosecha se produce cuando los frutos han alcanzado pleno desarrollo. Debido a que no se conoce la fisiología de la planta, no se puede determinar el momento de cosecha adecuado, para evitar la germinación de las semillas en las vainas. La cosecha se puede dar tres veces al año, dependiendo de las variedades e individuos, con una mayor concentración en los meses de agosto a octubre.

Los frutos fermentan a los cuatro a cinco días de cosechados maduros. Con almacenamiento en cámaras frías, pueden durar hasta tres semanas.

III. PERSPECTIVAS DE MEJORAMIENTO DEL CULTIVO

Diversidad genética:

La diversidad genética es muy grande tanto para el género Inga como para I. edulis. El género Inga tiene alrededor de 200 especies, de las que se utilizan para fines comestibles el "shimbillo pairajo", "vaca paleta" o "ingáaçu" (I. cinnamomea ), "ingape", "guamo negro" o "ingá-costela" (l. capitata), la "inga de macaco" o "ingá-cururu" (I. fagifolia), el "pacae", "inga peba" o "ingapéua" (I. macrophylla H.B.K.), el "shimbillo quebradero" (I punctata), el "shimbillo enano" (I. pilosula), el "shimbillo" (I. alba, I. altissiina, I. aria, I. bourgonii), entre otros.

En el caso de L edulis se han identificado dos sub especies: typica y parvifolia, correspondiendo la descripción anterior a la primera de ellas. La sub especie parvifolia tiene flores y frutos más pequeños.

Disponibilidad de recursos genéticos:

El INIA, Perú tiene instalada, en la estación experimental de Yurimaguas, una colección de gerinoplasma de la Amazonia peruana consistente de 53 entradas identificadas a nivel de género y especie, correspondiendo 13 de ellas a L edulis. Estas entradas proceden de 350 árboles muestreados y marcados. Un banco similar existe en el CATIE, Costa Rica.

Prioridades de investigación:

Como anteriormente se indicó, el cultivo de esta especie o de otras relacionadas, podría ser incentivado con el desarrollo de un mercado de consumo para la pulpa fresca de la fruta, lo cual a su vez puede ser logrado con el mejoramento genético de variedades y con generación de tecnología de conservación en fresco de la pulpa. En este caso, se debe desarrollar variedades en las que el arilo se desprenda fácilmente de la semilla, tenga menos fibra y se conserve fresco por mayor tiempo.

IV. UTILIZACION Y COMERCIALIZACION

Formas de utilización:

La fruta de las plantas del género Inga se utiliza como alimento, consumiéndose al natural la pulpa que rodea a la semilla. Esta pulpa es carnosa y de sabor dulce agradable. La madera de ciertas especies se utiliza de manera limitada en la construcción de viviendas rurales. El árbol de algunas especies de Inga se emplea como sombra para el café y el cacao, con la ventaja de mantener la humedad en la capa superficial del suelo.

Algunas comunidades indígenas de la Amazonia, además de consumir la fruta como alimento, utilizan las semillas y hojas con fines medicinales: antidiarrelco y antireumático. Las semillas de especies seleccionadas son consumidas por ciertos grupos indígenas de Araracuara. En El Salvador se emplea la corteza de algunas especies para la producción de taninos. En el Vaupes, Colombia, los indígenas utilizan la goma de ciertas especies para fijarlos colores destinados a pintar sombreros, canastas y otras artesanías.

Composición química y valor nutricional:

La composición promedio de 100 g de pulpa de guaba se presenta en el Cuadro 22.

Aspectos de agroindustrialización a pequeña escala:

No se conoce técnicas de industrialización del fruto; su consumo se da principalmente como fruto fresco al natural.

Cuadro 22

Valor nutricional de 10 g de pulpa de guaba.

Importancia económica potencial y comercialización:

El mercado de consumo es principalmente el local, debido a que se produce en la mayor parte de la Amazonia. Sin embargo, existe la posibilidad de tener un mercado de exportación si se seleccionan variedades y una metodología para conservar fresca la pulpa o arilo de la semilla.

V. FUENTES DE INFORMACION

Literatura:

Brako, L. y J. L. Zaruchi. 1993. Catálogo de las Angiospermas y Gimnospermas del Perú. Missouri Botanical Garden. St. Louis, Missouri, EE.UU. 1 286 p.

Collazos, C., R L. Whltc., H.S. White etal. 1975. La composición de los alimentos peruanos. Instituto de Nutrición. Minist. de Salud. Lima. 35 p.

Ruiz, J. 1993. Alimentos del bosque amazónico: Una alternativa para la protección de los bosques tropicales. UNESCO/ORCYT. Montevideo. 226 p.

GUANABANA

Annona muricata L.

Origen :

América tropical.

Distribución :

América tropical.

Descripción :

Arbol de 4 a 8 m de altura.

Adaptación :

Clima tropical y subtropical, pero no tolera heladas; tolera período seco, suelos ácidos y alcalinos.

Formas de utilización :

Pulpa de fruta fresca, o elaborada en helados, jugos, néctar, dulces, mermeladas.

Corteza, raíz y hojas en medicina popular.

l. DESCRIPCION Y HABITAT

Nombre científico y familia:

Annona muricata L. ANNONACEAE.

Nombre común:

"Guanábana", "catuche" "zapote agrio" (español), 16 graviola","coragao-de-rainha" (portugués), "soursop" (inglés), "corossol", "cachiman epineux", "corossel" (francés), "zuurzak" (holandés).

Sinónimos aceptados:

Annona bonplandiana H.B.K., Annona cearensis Barbosa Rodríguez, Annona maerocarpa auct.non Barbosa Rodrig.: Werkle, Annona muticata var. borinquensis Morales, Guanabanus muticatus (L.) Gomez.

Descripción botánica:

Arbol de porte pequeño, de cuatro a ocho metros, tronco recto, copa que puede tener pocas ramas o ramificaciones bajas casi verticales. Hojas alternas simples, brillantes en el haz y amarillentas en el envés, oblongas a aovadas, sub coriáceas, 5 a 15 cm de largo por 2 a 6 cm de ancho, ápice acuminado y base aguda. Flores solitarias o en pares que nacen a lo largo de las ramas o del tronco, amarillas, tres sépalos y seis pétalos en dos verticilos; los tres pétalos externos de 2 a 3 cm de largo y muy anchos (2 a 4 cm) y coriáceos. Los tres pétalos internos son grandes también y colocados alternos con los primeros. El receptáculo es grande y pubescente, con numerosos estambres en la base y ovario en la parte superior.

Las flores se abren al amanecer cuando las anteras están iniciando la expulsión del polen; los pétalos externos caen algunas horas después y los internos pueden caer juntos o durar algunos días más.

El fruto es un sincarpo ovoide, a menudo asimétrico (encorvado) debido a la polinización deficiente de los carpelos en el lado cóncavo (asimetría que también puede ser efecto de ataque de insectos), de 15 a 40 cm de largo por 10 a 20 cm de diámetro, pesa de 3 a 4 kg. Cáscara verde oscuro brillante, delgada, con areolas que presentan un pequeño apículo carnoso en el centro, aunque existen variedades de frutos casi lisos. La pulpa es blanca, jugosa, aromática, sabor agridulce a dulce. Las semillas ovoides y aplanadas son numerosas, miden 1,5 a 2,0 cm y tienen color marrón oscuro a negro brillante.

Origen:

Se han encontrado plantas en estado silvestre tanto en las antillas como en diversos puntos de la Amazonia, por lo que el centro de origen puede ser compartido entre varios lugares. La presencia es principalmente como forma domesticada, lo que no facilita la precisión de la zona de origen. La guanábana fue cultivada por las culturas precolombinas en la costa peruana.

Ecología y adaptación:

La guanábana es cultivada en muchas áreas de la zona tropical, desde el sur de Florida (EE.UU.) hasta el sur de Brasil. Fue una de las primeras especies llevadas de América para otras regiones, por lo que está bastante dispersa. Se siembra en las zonas tropicales donde no se puede cultivar adecuadamente la chirimoya. Crece en climas tropicales y subtropicales, pero no tolera las heladas; las temperaturas nocturnas menores a 12'C producen abortos florales, defoliaciones y muerte de brotes. Requiere precipitación pluvial mayor a 1,000 mm/año, pero bien distribuida. Crece en zonas con 4,000 mm de lluvia por año, y aunque desarrolla adecuadamente en zonas húmedas, no tolera las condiciones de mal drenaje. Durante la floración necesita de un período de estiaje, a fin de favorecer la fecundación de las flores; el exceso de lluvias en esta fase produce la caída de las flores.

Los suelos más adecuados son los profundos, de textura media, sin problemas de drenaje y con adecuado nivel de nutrientes. Las plantas sembradas en suelos deficientes en calcio y fósforo y con alta saturación por aluminio, generalmente no fructifican bien. Desarrolla mejor en suelos con pH mayor a 6,0. Es una planta que requiere bastante luminosidad; el exceso de sombra produce elongamiento y trastornos en el desarrollo de las plantas.

II. LA PLANTA Y SU CULTIVO

Métodos de propagación:

El método más utililizado para propagar la guanábana es por semilla. Se conoce la tecnología para su injerto por el método inglés de doble lengüeta, aunque también se utiliza el de yema con astilla y el de escudete. Las yemas deben provenir de ramas que tengan más de un año de edad. El injerto también se utiliza cuando se emplea la guanábana como patrón para la chirimoya. La propagación por injerto tendrá mayor uso cuando se logren variedades mejoradas.

Las semillas tomadas de plantas de buena productividad y buenas condiciones sanitarias (descartar las atacadas por broca), deben ser lavadas hasta eliminar el mucílago y secadas a la sombra por dos a tres días. Estas semillas guardadas en recipientes herméticamente cerrados conservan su viabilidad por varios meses. Para sembrar las semillas, éstas deben ser remojadas en agua por doce horas y después colocadas a 5 cm entre sí y 2 cm de profundidad en germinadores de 1,2 m de ancho por 0,20 m de profundidad de sustrato (tierra vegetal, arena y ceniza en la proporción 2: l: l). En promedio se utilizan 500 g de senúllaS/M2 , equivalente a 1,160 semillas.

Las semillas que se extraen de frutos completamente maduros y sembradas inmediatamente, presentan alto poder germinativo. La germinación es epigea y se inicia a partir de los 30 días, hasta el día 46 en que se alcanza el máximo (Figura 16). La reducción del contenido de humedad de la semilla de 30 a 7% no afecta el poder germinativo. A los 30 días de germinadas, las plántulas están en condiciones de ser repicadas al vivero. En el vivero pueden ser colocadas en bolsas con 2 kg de tierra o directamente en la tierra, para ser trasplantadas a raíz desnuda. Las plantas se llevan al campo definitivo cuando tienen 50 a 70 cm, lo que ocurre alrededor de 80 días después del repique.

Prácticas culturales y producción:

La siembra en campo definitivo se efectúa a distanciamientos muy variables, recomendándose el de 6 por 6 m, y el de 7 por 7 m, sea en cuadrado o en tresbolillo. El trasplante se efectúa durante la época de lluvias. Los hoyos deben tener una profundidad de 50 cm y deben recibir las cantidades adecuadas de estiércol, cal y roca fosfatada.

Figura 16

Los cuidados culturales que debe recibir son los normales, aunque en este caso las podas se harán principalmente por razones sanitarias. Asimismo, la planta requiere podas de formación, que consisten en desbrotar el tronco, eliminar los chupones y el descope a 1,5 m para producir plantas bajas. El abonamiento debe hacerse en función al análisis del suelo, pero teniendo presente que la guanábana es considerada como una planta exigente en fósforo y potasio.

Aun cuando la floración puede empezar desde el segundo año, las cosechas comerciales sólo se obtienen a partir del cuarto año, dependiendo de las condiciones ecológicas y del manejo del cultivo. Las plantas injertadas empiezan a producir comercialmente al tercer año.

La guanábana tiene problemas de polinización, lo que se refleja en la baja productividad natural. Aun cuando se conoce la metodología para la polinización artificial, lo recomendable sería determinar técnicas para aumentar la polinización natural. La polinización artificial se efectúa recogiendo las flores en la tarde y al día siguiente en la mañana se aplica el polen sobre los estigmas receptores con pincel o con la mano. Las flores se polinizan al día siguiente de haber abierto, cuando han cambiado de color verde a amarillo y se protegen dentro de una bolsita. La planta, normalmente, aborta la mayoría de las flores; de 150 a 200 flores cuajan dos a tres al año, mientras que, con la polinización artificial, se pueden lograr 20 a 30 frutos por árbol.

Cada planta produce entre 12 a 24 frutos, con un peso medio de 2,0 kg. Estos parámetros varían mucho por el uso de plantas francas y por el manejo que se le dé a la plantación en cada región. Con la densidad de 204 plantas/ha esto equivale a 4,9 a 9,8 t/ha. Este rendimiento puede ser mayor; por ejemplo, bajo condiciones de riego, una planta produce 70 kg en el noreste de Brasil. La fructificación se concentra entre diciembre y marzo, pero la planta tiene frutas durante todo el año. En la región de Belém, Pará, la cosecha tiene su pico en agosto (Figura 17), con los frutos producidos entre julio y setiembre, normalmente, con mayor tamaño y mejor calidad.

Principales plagas y enfermedades.

Control:

Las principales plagas de la guanábana son las mismas que en la anona: la broca del fruto y la broca del tallo. La broca del fruto (Cerconola annonella), es una mariposa que cuando adulta tiene 2,5 cm de envergadura, color blanco ceniza con reflejos plateados. Se presenta en la plantación desde la floración, ovopositando en las flores y frutos. Las larvas de 2 cm de largo y color rosado, perforan el fruto y se alimentan de la pulpa y las sencillas. Los frutos atacados se presentan retorcidos, desarrollando partes ennegrecidas y caen. El ciclo de vida del insecto, desde huevo a adulto, dura máximo 30 días. El control se debe realizar eliminando los frutos atacados, quemándolos o enterrándolos, practicando podas sanitarias y utilizando trampas a razón de una por cada ocho plantas. El control químico se realiza con Carbaril (150 g/1OO1 agua) o Thriclorflon (200 ml/IOO 1 agua), tres aplicaciones a intervalos de 25 a 30 días. De ser necesario, aplicar cada quince días, desde el inicio de la floración hasta 30 días antes de la cosecha.

Figura 17

La broca del tronco y las ramas (Cratosomus bombina), curculionido, tiene 2 cm de largo y color oscuro. Cada hembra pone un huevo por día, en orificios de 4,5 mm de profundidad en troncos y, en ramas, de hasta 2 cm de diámetro. Después de 16 a 21 días eclosionan las larvas que penetran en la madera, formando galerías y promoviendo la exudación de savia ennegrecida. Durante la fase larval, los insectos, son expelados por los orificios de las posturas y por otros abiertos posteriormente por las larvas. Para empupar, la larva construye una cámara donde permanece hasta su último estado de crecimiento. Se controla con podas de limpieza, eliminando las ramas atacadas y aplicando una pasta de oxicloruro de cobre (20 gll de agua) en la zona atacada. Se puede pintar el tronco y las ramas gruesas con aceite quemado o con la mezcla de sulfato de cobre (1kg), cal apagada (4 kg), azufre (100 g), Diazinon 11-40 (200 g), sal de cocina (1 00 g) y agua (1 2 l). El control químico se realiza con pulverizaciones a base de Omethoate en la concentración de 150 ml/IOO g de agua, cubriendo totalmente la planta e inyectándola en las perforaciones.

También se observa ataque del perforador de la semilla y del fruto (Bephrata maculicollis Cameron), himenóptera, cuyas larvas hacen galerías hasta encontrar las semillas que consumirán. Los frutos se pasman y momifican. Se controla con Cebycid 80 al 0,2%, Lebaycid al 0,12% o Diazinon al 0,4%, en tres aplicaciones: la primera al formarse el fruto, alrededor de ocho días después de la fecundación, la segunda tres semanas después y la tercera cuando los frutos alcanzan el tamaño normal.

La enfermedad que se ha reportado como posible problema en la Amazonia es la antracnosis (Colletotrichum gloesporioides Penzlg), que ataca hojas, ramas, flores y frutos, produciendo la podredumbre negra del fruto, especialmente en la época lluviosa. Se controla con la poda y quema de las partes afectadas, seguida (o precedida en el control preventivo) por pulverizaciones periódicas de fungicidas carbamatos o a base de cobre.

Tecnología de cosecha y poscosecha:

La cosecha de los frutos debe hacerse cuando el color verde oscuro brillante cambia a verde claro y cuando las areolas o espinillas carnosas desaparecen. En este momento la guanábana alcanza su máximo desarrollo y madura muy rápidamente. No se recomienda dejar que los frutos maduren en la planta, por lo que debe recorrerse la plantación periódicamente. No se debe coger los frutos muy verdes, porque en este caso la pulpa queda con un sabor amargo por la maduración forzada. De manera práctica se conoce que el fruto está listo para cosechar porque pierde su brillo característico, tomando un tono opaco.

El fruto es muy sensible a la compresión y a los golpes, por lo que debe cosecharse verde y tener cuidado en el manipuleo. Debe evitarse apilar muchos frutos. Se recomienda el uso de cajas de madera con 15 a 20 kg de capacidad.

III. PERSPECTIVAS DE MEJORAMIENTO DEL CULTIVO

Diversidad genética:

Debido a la dicogamia que favorece la polinización alógama, existe mucha diversidad genética en la especie. Esta diversidad se manifiesta en plantas cuyos frutos tienen pulpa dulce, algo agridulce y agridulce. Frutos con formas redondas, cordiformes y oblongos. Frutos con pulpa suave a consistente. Frutos que a la maduración mantienen la cáscara verde y frutos cuya cáscara se toma pardo oscuro. Frutos con areolas notorias y frutos con areolas no muy notorias (frutos casi lisos).

Disponibilidad de recursos genéticos:

Son escasas las referencias sobre la existencia de especies silvestres, predominando las especies domesticadas. Estudios para la selección de variedades específicas para las condiciones del Cerrado, de Bahía y de la Amazonia, vienen siendo efectuados por EMBRAPA en Brasilia, Barrolandia y Belém, existiendo colecciones de germoplasma en la Empresa Pernambucana de Pesquisa Agropecuaria, Recife, Pernambuco (15 entradas de Brasil), la Estación Experimental de Fruticultura Tropical de Conceigáo do Almeida, Bahia (8 entradas de Brasil, 3 de Venezuela, 1 de México) y el INPA, Manaus (1 1 entradas de Brasil, 3 de Venezuela).

También se encuentran recursos genéticos en la Universidad Nacional Agraria "La Molina", Lima (6 entradas de Perú) y en el FONAIP, Maracay, Venezuela (7 entradas). En Costa Rica, el CATIE, Turrialba, tiene un banco con 65 entradas (34 de ellas de Costa Rica), mientras que en Puerto Rico, la Universidad de Puerto Rico tiene en Mayaguez un banco con 250 especies colectados en el Caribe.

En la India, el Instituto Indio de Investigación Hortícola, IIHR, tiene un banco con 100 introducciones de Annonas, algunos de ellos de A. muricata.

Prioridades de investigación:

Principalemente se debe investigar cómo mejorar la polinización y formación del fruto, a fin de aumentar la productividad. También se debe seleccionar variedades con mayor rendimiento, con mayor aroma y sabor agridulce y menor contenido de fibra. El control integrado de las plagas debe ser investigado a finde tener la mínima pérdida de calidad y de productividad. Considerando la necesidad de controlar la broca de] tallo y de] fruto. La reducción en el tamaño de la planta, por injerto sobre otras anonáceas, por ejemplo, A. glabra, debe ser estudiada con detalle.

También debería investigarse las diferentes cualidades farmacológicas atribuidas a la guanábana. La farmacología popular atribuye al fruto verde propiedad para combatir la dispepsia atónica, diarrea y disenteria crónica, así como ser astringente. A la semilla se le atribuye ser hemética y antiespasmódica; triturada y colocada en una infusión de alcohol se usa para eliminar los piojos, la tintura provoca vómito abundante y repetido. La infusión de las hojas es utilizada como antiespasmódico, astringente y combate la indigestión gástrica.

IV. UTILIZACION Y COMERCIALIZACION

Formas de utilización:

Al igual que las otras anonáceas, la guanábana se consume como fruta fresca, pero mayormente se utiliza en forma industrializada como helados, jugos y néctares. El sabor agridulce característico, así como su aroma, le confieren buena aceptación. En el Perú las variedades cultivadas en la Amazonia tienen preferencia para la industrialización por su mayor sabor agridulce, con relación a las variedades cultivadas con riego en la costa desértico.

En la medicina nativa se utiliza la corteza, raíz y hojas para producir té para la diabetes, como sedativo y como antiespásmodico. Las hojas y los frutos verdes son referidos como antidiarreicos y como productos astringentes, entre otros.

Composición química y valor nutricional:

La pulpa constituye alrededor de 80% de la fruta, la cáscara 10 a 12% y las sencillas y el centro representan 8 a 10% de la fruta. La pulpa tiene 19 brix, pH 3,7 y 78 a 82% de agua (Cuadro 23).

Cuadro 23

Valor nutricional de 100 g de pulpa de guanábana.

Aspectos de agroindustrialización a pequeña escala:

Contrariamente a las otras anonáceas, la guanábana es un fruto típico para la industrialización. La pulpa no se oxida como en la anona o en la chirimoya. El agradable aroma y sabor de su pulpa le confiere ventajas en este aspecto. La pulpa tratada a 70'C por 20 minutos, con adición de 0,5% de ácido ascórbico como antioxidante y empacada en bolsa de polietileno de alta densidad puede guardarse hasta por un mes a 5'C.

La producción de pulpa congelada y de néctar por pequeñas empresas es relativamente fácil, no requiriendo grandes inversiones. El néctar producido y envasado a nivel de microempresa puede tener en promedio 17,8% de pulpa de guanábana, 10,7% de azúcar, 0,02% de benzoato de sodio y 0,02% de metabisulfito de sodio, con el resto completado por agua y con tratamiento térmico a 1 OO'C por 15 minutos. En este caso 330 kg de fruta pueden rendir 2,000 botellas de néctar de 500 ml cada una.

También se preparan mermeladas, las cuales tienen pHentre 3,1 y 3,3; 60% de concentración de jarabe y 3 1 % de azúcar añadido en relación a los azúcares totales.

Importancia económica potencial y comercialización:

El mercado de la pulpa de guanábana para la elaboración de helados, refrescos y néctares es bueno en los países de América tropical. El consumo también se da como fruta fresca, aunque, en menor proporción. Existe interés industrial por la guanábana con sabor más agridulce que no puede ser satisfecho por la falta de plantaciones comerciales.

V. FUENTES DE INFORMACION

Literatura:

Barbosa, W. C., R. F. R de Nazaré y K. Hasimoto. 1981. Estudio tecnológico y nutricional de las frutas de Annona muricata y Spondias lutea. Bol. Pesquisa 32:1-11. CPATU/EMBRAPA. Belém.

Brako, L. y J.L. Zaruchi. 1993. Catálogo de las Angiospermas y Gimnospermas del Perú. Missouri Botanical Garden. St. Louis, Missouri, EE.UU. 1 286 p.

Calderón, G. 1992. Cultivo de la guanábana (Annona muricata). Problemas fitosanitarios. pp 227-231. Fruticultura tropical. Federación Nacional de Cafetaleros de Colombia. Bogotá.

Calzavara, B. B. G. y C. H. Müller. 1987. Fruticultura tropical: a graviolera (Annona muricata) L. Serie Documentos. EMBRAPA/ CPATU. Belém. 36 p.

Castro, F. A. s/f. Néctar de graviola. Fundação Nucleo de Tecnología e Industria. Sec. Ind. e Turismo do Ceara. 22 p.

Cavalcante, P. V. 1991. Frutas comestiveis da Amaz6nia. 5a cd. Edi9i5es CEJUP, Museo Paraense E. Goeldi, Belém. 279 p.

Duke, J.A. y R. Vásquez. 1994. Amazonían ethnobotanical dictionary. CRC Press. Boca Raton, Florida. 215 p.

Guzmán, F. 1992. La Guanábana. Revisión bibliográfica. pp: 232-253. Fruticultura Tropical. Federacion Nacional de Cafetaleros de Colombia. Bogotá.

IBPGR. 1992. Directory of germplasm collections. 6.1. Tropical and subtropical fruits and tree nuts. Bettencourt, E., Hazekamp, Th. and Perry, M. C. Intemational Board for Plant Genetic Resources. Rome. 337 p.

Hemández, A., A. Chaverri., L. Montealegre y J.Calzada. 1989. Procesamiento de guanábana para la obtención de pulpa. ASBANA. Revista de la Asociación Bananera Nacional. 13 (31):18-20. Costa Rica.

Ledo, A. S. 1992. Pragas da graviolera no Estado do Acre. Recomendações para seu control. Centro de Pesquisa Agroforestal do Acre. Río Branco. 6 p.

GUANABANA CIMARRONA

Annona montana Macf.

Origen :

Amazonia o las Antillas.

Distribución :

América tropical.

Descripción :

Arbol de 10 a 15 m de altura, con ramificaciones bajas.

Adaptación :

Igual a la guanábana, pero con mayor tolerancia al frío.

Formas de utilización :

Pulpa de fruta fresca, o elaborada en helados, jugos, néctar y dulces.

Hojas en medicina nativa.

l. DESCRIPCION Y HABITAT

Nombre científico y familia:

Annona montana MacL ANNONACEAE.

Nombre común:

"Guanábana cimarrona", "guanábana", "guanábana de perro", "guanábana de loma", "turagua" (español), "araticum", "araticum-alu", "araticum-apé" (portugués), "mountain soursop", "wild soursop" (inglés), "corossolier batard" (francés).

Sinónimos aceptados:

Annona maregravii C. Martius, A. muricata Vell. Conc., A. pisonis C. Martius, A. Sphaerocarpa Splitgerber.

Descripción botánica:

Arbol pequeño de 10 a 15 m de altura, con ramificaciones bajas, follaje denso, verde oscuro, hojas simples, alternas, verde oscuras y brillosas en el haz, elípticas o elíptico oblanceoladas, hasta 25 cm de largo y 8 cm de ancho, base obtusa y ápice corto y acuminado. Flores grandes, solitarias, ubicadas en el tronco principal o en las ramas, cáliz verde, corola amarilla.

El fruto es un sincarpio oviforme o redondeado, hasta 25 cm de largo y 15 cm de diámetro, cáscara verde con numerosos apículos carnosos rectos, frecuentemente color amarillo cuando madura, pulpa blanquecina o amarilla, medio fibrosa, mucilaginoso, con fuerte aroma; numerosas semillas, obovadas, cerca de 1,5 cm, marrón amarillentas.

Origen:

No está definido si su origen es la Amazonia o las Antillas.

Ecología y adaptación:

Planta adaptada muy bien en toda América tropical, al igual que la guanábana, pero con mayor tolerancia al frío.

II. LA PLANTA Y SU CULTIVO

Métodos de propagación:

Se propaga por semilla y por injerto, de manera similar a la descrita para la guanábana (Annona muricata L.).

Las semillas presentan comportamiento típicamente ortodoxo, tolerando el secado y las temperaturas menores a cero grados. Cuando se siembran inmediatamente después de extraídas del fruto, el proceso de germinación es rápido, iniciándose la emergencia de plántulas a los 28 días de la siembra. El porcentaje de semillas germinadas a los 44 días, es superior a 80%, obteniendo valores cercanos a 95% en el día 58 (Figura 18). Cuando las semillas son secadas, el proceso es más lento, con una acentuada desuniformidad, alcanzando el máximo de germinación solamente a los 100 a 120 días después de la siembra. La germinación es de tipo epigea.

Figura 18

Las semillas tienen color pardo amarillo y son más grandes que las de la guanábana (Aizizoi a L.) y de la anona (Rollinia mucosa Jacq. Bail). Los frutos tienen un promedio de 142 semillas, existiendo mucha variabilidad en esta característica determinada, principalmente, por el tamaño del fruto. Se encuentran frutos con solamente 27 semillas, como otros con hasta 232 semillas. El peso de cada semilla varia entre 0,43 y 1,06 g.

La propagación por injerto le da precocidad a la planta, iniciando la producción de frutos, dos años después de la siembra en campo definitivo. El método de injerto que tiene mejor prendimiento es el de escudo. Como portainjerto se puede utilizar la misma guanábana cimarrona u otras anonáceas, obtenidas de semillas. Cuando el objetivo es reducir el tamaño de la planta o la siembra en áreas encharcadas, el portainjerto más indicado es la Annona glabra.

Prácticas culturales y producción:

Florece durante casi todo el año, pero, las plantas silvestres tienen una baja producción de frutos, cuya maduración, en Iquitos, Perú, ocurre entre ulio y diciembre. Aunque no se conoce la agronomía del cultivo ni el ciclo productivo, posiblemente, éstos sean similares al de la guanábana. El rendimiento puede estar en el rango de lo indicado para la guanábana, es decir 12 a 24 frutos por planta, con peso entre 1,5 y 2,0 kg por fruto.

Figura 19

En Belém, Pará, Brasil, las plantas cultivadas en suelo de baja fertilidad presentan baja productividad (Figura 19), lo que es más notorio cuando se compara con otras anonáceas.

La producción se distribuye en todos los meses del año, con mayor concentración en el segundo semestre. El pico de la cosecha ocurre en el mes de octubre (Figura 20).

Figura 20

Principales plagas y enfermedades.

Control:

Cerconota anonella, insecto descrito en la ficha de la guanábana (A. muricata) también ataca a la anona (R. mucosa) y otras anonáceas, produce daños en las senúllas de guanábana cimarrona, aunque la intensidad de los daños y la frecuencia del ataque es menor que en la guanábana y en la anona.

Otras plagas observadas en la especie, aunque con baja intensidad de daño son: la mosca blanca de los cítricos (Aleurothrixus floccosus), el bicho del cesto (Oiketicus kirbyi) que come las hojas y la Saissetia coffeae. La mosca blanca de los cítricos provoca 1 a formación de grandes cantidades de fumagina.

Tecnología de cosecha y poscosecha:

La cosecha de los frutos debe hacerse cuando han completado su desarrollo, evidenciado por un color verde oscuro. No debe dejarse que los frutos inicien la maduración en el árbol, siendo necesario inspeccionar la plantación periódicamente. No se deben coger los frutos muy verdes, porque la maduración no es adecuada. El fruto es muy sensible a la compresión y a los golpes, por lo que debe tenerse cuidado en el manipuleo.

III. PERSPECTIVAS DE MEJORAMIENTO DEL CULTIVO

Diversidad genética:

Existe gran variabilidad genética para las características de productividad, tamaño de areola, rendimiento de pulpa, brix, acidez de la pulpa, tamaño, forma del fruto, peso y número de semillas por fruto. Esta variabilidad no ha sido estudiada, pero, corresponde con su amplia distribución en toda la América tropical. Las variedades cultivadas en los países andino amazónicos presentan mayor tolerancia al frío.

Disponibilidad de recursos genéticos:

La fuente donde se puede obtener germoplasma son las fincas de los productores, ya que la disponible en instituciones está limitada al INPA, Manaus (tres entradas) y al Subtropical Horticultural Research Unit-USDA, Mianii (cinco introducciones) y al CPATU, Belém.

Prioridades de investigación:

El desarrollo de este cultivo depende de la generación de una tecnología específica, en base a la ya generada para otras anonáceas. En el caso de la guanábana cimarrona, se debe empezar colectando y evaluando el germoplasma existente, a fin de determinar los que tengan mayores posibilidades de mercado y de industrialización. Paralelamente se debe validar y adaptar las técnicas de propagación y de manejo cultural conocidas para la guanábana y la anona.

IV. UTILIZACION Y COMERCIALIZACION

Formas de utilización:

El fruto es consumido al natural, aunque tiene un sabor considerado inferior al de la guanábana (Annona muricata L.) y al de la anona (Rollinia mucosa Jacq.). Debido a que es menos dulce (Brix entre 9,5 y 18,0) que la guanábana (Brix entre 14,0 y 17,0) y que la anona (Brix entre 9,0 y 18,2). Normalmente, es consumido añadiendo algo de azúcar a la pulpa.

Las nativas Urubu Kaapor de la Amazonia brasileña utilizan la infusión de las hojas para aliviar el dolor del embarazo.

Composición química y valor nutricional:

La composición centesimal del fruto y de la semilla es similar al de la guanábana (Annona muricata), con rendimiento de pulpa algo inferior, y la presencia de semillas de mayor tamaño. En el Cuadro 24 se presenta la composición química promedio de 100 g de la parte comestible.

Cuadro 24

Composición química promedio de 100 g de pulpa de guanábana cimarrona (IBGE, 1981).

Aspectos de agroindustrialización a pequeña escala:

No se han efectuado ensayos de industrialización, pero podrían iniciarse tomando como referencia la industrialización de la guanábana (Annona muricata L.). El aroma y sabor peculiar de la pulpa de la guanábana cimarrona puede ser atractivo en cierto público si se industrializa adecuadamente. Si la pulpa tiene el mismo comportamiento industrial que la guanábana, entonces, la producción de pulpa congelada y de néctar por pequeñas empresas será relativamente fácil.

Importancia económica potencial y comercialización:

El mercado actual de la guanábana cimarrona es para consumo como fruta fresca, pero existe un mercado potencial en la elaboración de helados, refrescos y néctares, de manera similar que en la guanábana. Sin embargo, en est e caso los productos elaborados tendrían que abrirse mercado a través de un programa de promoción más intenso que el de la guanábana, que ya es conocida en ciertos niveles.

V. FUENTES DE INFORMACION

Literatura:

Calzada, J. 1980. 143 Frutales nativos. Lib. El Estudiante. Lima, Perú. 2 1 0 p.

Cavalcante, P. V. 1991. Frutas comestiveis da Amaz6nia. 5a ed. Edi9i5es CEJUP, Museo Paraense E. Goeldi, Belém. Brasil. 279 p.

IBGE. 1981. Tabelas de composição de alimentos. Río de Janeiro: Secretaría de Planejamiento da Presidéncia da República. Brasil. 213 p.

IBPGR. 1992. Directory of gennplasm collections. 6.1. Tropical and subtropical fruits and tree nuts. Bettencourt, E., Hazekamp, Th. and Per-ry, M. C. Intemational Board for Plant Genetic Resources. Rome. 337 p.

GUARANA

Paullinia cupana var. sorbilis (Mart.) Ducke

Origen :

Amazonía, probablemente domesticado en el estado de Amazonas, Brasil.

Distribución :

Cuenca amazónica de Brasil, Perú, Ecuador y Colombia.

Descripción :

Arbusto de 2 a 3 m de altura, postrero cuando sombreado.

Adaptación :

Clima cálido y húmedo, soporta período seco de tres meses, suelos bien drenados, no tolera mal drenaje.

Formas de utilización :

Polvo de semilla como estimulante.

Hojas en medicina nativa.

Semilla para elaborar refrescos y bebida gaseosa.

l. DESCRIPCION Y HABITAT

Nombre científico y familia:

Paullinia cupatia var.sorbiliv (Mart.) Ducke. SAPINDACEAE

Nombre común:

"Guaraná", "cupana" (español), "guaraná" (portugués)

Descripción botánica:

Arbusto trepador perenne con dos a tres metros de altura cuando está cultivado a pleno sol y postrado cuando está sombreado. Crece como un sarmiento y alcanza el estrato superior de la vegetación. Tallo de coloración castaño amarilla, sin surcos; ramas nuevas con cuatro a cinco surcos longitudinales. Hojas altemas, imparipinnadas, compuestas de cinco foliolos coriáceos, cuatro son opuestos dos a dos, quedando el quinto en la extremidad de la hoja. Vainas bien desarrolladas, brácteas caducas, una en cada lado de la hoja, zarcillos presentes y localizados en las axilas de las hojas.

Inflorescencia en forma de racimo, con tamaño superior a 30 cm, formada de flores masculinas y femeninas, incompletamente unisexuadas. Flores femeninas con estambres aparentemente normales, pero, con anteras indehiscentes, ovario tricarpelado y triloculado con un óvulo por lóculo, estigma trífido, pudiendo ser fecundados uno, dos o tres óvulos.

Flores masculinas con ocho estambres, en tres tamaños diferentes, ovario rudimentario, estilo y estigma poco desarrollados que caen después de la antesis. Cáliz formado por cinco sépalos, dos menores y externos que envuelven a tres más estrechos y semejantes a los pétalos. Corola con cuatro pétalos blancos, en forma de capucha, presentando internamente escamas coriáceas.

El fruto es una cápsula con dehiscencia a lo largo de los septos (septicida), con 2,0 a 2,5 cm de diámetro, puntiagudo en la extremidad apical, epicarpio de color rojo-amarillento cuando está completamente maduro. Dependiendo del número de óvulos fecundados el fruto puede contener una, dos o tres semillas de forma aproximadamente esférica y de coloración crema en la porción basal y castaño-oscura en el resto.

La semilla está envuelta, parcialmente, por un arilódio blanco y friable. El arilódio es más grueso en la base de la semilla, donde se encuentra el embrión, adelgazando a medida que se proyecta para el ápice, dejando expuesto el tercio superior de la porción distal de la semilla y parte del tegumento. Embrión con radícula no diferenciada en la semilla madura.

Origen:

Nativa de la Amazonia, no siendo posible afirmar con seguridad el centro de origen de la especie, pues, solamente se encuentra en estado cultivado. Probablemente, la región de Maués, en el estado de Amazonas, Brasil; donde fue domesticada la variedad sorbilis, constituya el centro de diversidad de esta variedad. En cambio, P. cupana var. typica podría tener su centro de variabilidad en la zona del alto río Orinoco y del alto río Negro, en la zona fronteriza entre Brasil, Colombia y Ecuador.

Ecología y adaptación:

La planta desarrolla bien en áreas que presentan temperatura media anual entre 23,0 y 26,5'C, temperatura mínima media anual entre 20,0 y 23,O'C y temperatura mínima media del mes más frío entre 16,5 y 23,O'C y con deficiencia hídrica anual menor o igual a 250 mm. Los lugares donde las condiciones térmicas e hídricas se desvían acentuadamente, para más o para menos,no son recomendables para este cultivo.

Los suelos para el cultivo deben ser profundos, bien drenados y porosos, ya que la planta no soporta el encharcamiento. En la Amazonia brasileña es cultivado tanto en suelos de baja fertilidad natural, como son los Latosoles Amarillos, como en suelos eutróficos (Terra Roxa Estrururada). En el segundo caso, la productividad del guaraná es mucho mayor.

II. LA PLANTA Y SU CULTIVO

Métodos de propagación:

El guaraná puede ser propagado tanto por vía sexual como por procesos vegetativos. En el primer caso, existe el incoveniente de que las plantas obtenidas por semilla no reproducen las características de la planta madre, ya que la especie es esencialmente alógama, con gran variabilidad genética.

Las semillas para producción de plántulas deben ser tomadas de frutos en completo estado de maduración, caracterizados por el color rojo del epicarpio y por estar en inicio de dehiscencia. Las semillas, después de extraídas de los frutos, se deben lavar con agua corriente para eliminar el arilódio y sembrarlas inmediatamente. La recomendación de sembrar inmediatamente después del proceso de extracción y remoción del arilódio es importante, en vista que las semillas presentan comportamiento recalcitrante y pierden rápidamente su viabilidad, cuando son expuestas a condiciones que impliquen perdida de humedad. Normalmente, pierden por completo la capacidad de germinación tres días después de la cosecha.

En la imposibilidad de efectuar la siembra el mismo día de la cosecha o siendo necesario transportar las semillas para localidades distantes, se recomienda estratificarlas en sustrato humedecido con agua. Este sustrato puede ser aserrín, carbón vegetal molido, vermiculita, así como arena. En estas condiciones, las semillas pueden ser mantenidas por 40 a 50 días sincomprometer su capacidad de germinación. Períodos más largos no son recomendables, puesto que las semillas comenzarán a germinar cuando todavía están estratificadas, dando origen a plántulas anormales.

El proceso germinativo es bastante lento y con acentuada desuniformidad, iniciándose la emergencia de las plántulas 70 días después de la siembra y estabilizándose a los 180 días, cuando la germinación alcanza valor superior a 85% (Figura 21).

Después de la emergencia, la fase de vivero es compuesta de dos períodos consecutivos de cinco a seis meses cada uno, diferenciados por el tipo de hojas que producen las plántulas. En el primer período ocurre la producción de una hoja simple por mes. El segundo período es caracterizado por la producción de hojas compuestas con cinco folíolos, que ocurre después que la plántula ha producido seis a siete hojas simples.

Figura 21

La propagación por estaca es el método de propagación vegetativa más usado, aunque la planta también puede ser propagada por acodo aéreo y por injerto.

Las ventajas de las plántulas obtenidas por procesos vegetativos son la mayor precocidad para alcanzar la fase productiva y la posibilidad de reproducir totalmente el genotipo de la planta madre.

Para el enraizamiento de estacas se necesita un sistema de nebulización intermitente. Las estacas, antes de ser colocadas en el propagador deben tener su base tratada, por vía seca o húmeda, con ácido indol-butírico en la concentración de 5,000 a 6,000 ppm. El tipo de estaca que presenta mejor capacidad de enraizamiento es la herbácea. El período de enraizamiento varía de acuerdo con la planta madre. En las matrices dotadas de alta capacidad de regeneración, el enraizamiento ocurre 45 días después de la colocación de las estacas en el propagador, mientras que en las de baja capacidad de enraizamiento, sólo se observa después de 100 días.

Con relación al injerto y al acodo aéreo, estos procesos solamente son recomendados cuando se desea propagar en pequeña escala, plantas con características altamente deseables, cuyas estacas sean de difícil enraizamiento o, aun, cuando no se dispone de sistema de nebulización. El injerto tiene como factores limitantes el largo tiempo para la obtención de portainjerto y la dificultad de retirar las yemas, como consecuencia de la configuración surcada de las ramas. El principal factor limitante del acodo aéreo es el reducido número de plántulas que pueden ser la obtenidas de una determinada matriz.

Prácticas culturales y producción:

La instalación en el lugar definitivo se realiza en la época lluviosa, pudiendo adoptarse el distanciamiento de 5 x 4 m, 5 x 3 m, 6 x 3 m, 4,5 x 3,5 m ó 4 x 4 m.

Inmediatamente después del trasplante, las plántulas deben ser protegidas de la radiación solar directa, cubriéndolas con hojas de palmera o con trozos de madera arreglados en forma de hoguera. Este procedimiento es necesario en vista de la gran susceptibilidad de la planta, en esta fase inicial de crecimiento, a la radiación solar directa. A partir del sexto mes o un poco más, dependiendo del crecimiento de las, se iniciará el raleamiento de la plantas cobertura, hasta dejar a la planta completa mente expuesta al sol.

Al momento del trasplante, los hoyos deben ser abonados con 1 0 litros de estiércol y 120 g de superfosfato triple y tres meses después con 20 g de urea y 85 g de sulfato doble de - potasio y magnesio, aplicados en un radio de 20 cm. El abonamiento con úrea debe ser repetido en el sexto y noveno mes, a dosis de 40 g por planta. En el sexto mes también es recomendada la aplicación de 10 g de bórax y 10g de sulfato de zinc por planta.

Las cantidades de abonos a aplicar del según do al quinto año después del trasplante se presentan en el Cuadro 25.

A partir del sexto año, las cantidades de abono que deben ser aplicadas son iguales a las del quinto año.

Cuadro 25

Recomendaciones de abonamiento para el cultivo de guaraná, en g/planta. (Castro, 1992).

La poda de frutificación es efectuada después de la cosecha de los frutos, cortándose las ramas, tanto donde ocurrieron fructificaciones, como en aquellas muy desarrolladas y decumbentes. Esta poda busca la emisión de nuevas ramas, puesto que la fructificación de la planta ocurre en los brotes del año. Paralelamente, se efectua la poda de limpieza, eliminándose las ramas secas.

Una plantación bien conducida, tiene una media de producción de 1 a 2 kg de semilla seca por planta y año. En un mismo campo es común encontrar plantas con producción anual de 0,1 kg y otras con producción de hasta 4,0 kg.

Principales plagas y enfermedades.

Control:

La planta es afectada por diversos patógenos, principalmente hongos y bacterias, no habiéndose reportado todavía la incidencia de virus.

Las principales enfermedades funcrosas, con los respectivos agentes etiológicos son: antracnosis, causada por Colletotrichíim guaranicola; mancha negra de los frutos, causada por Colletotrichuin sp.; costra negra, causada por Septoria paullitiae; pudrición reja de la raíz, cuyo agente es Gtinoderina philippii; superbrotamiento causado por Fusarium decemcellurare.

El control de la antracnosis que constituye la principal enfermedad, puede ser efectuado con pulverizaciones de Benomyl al 0, 1 %, o con fungicidas cúpricos al 0,3%. Las enfermedades del superbrotamiento y la mancha negra también son controladas con Benomyl, en la misma concentración. Para el control de la costra negra puede ser utilizado el Captafol al 0,2%. Para la pudrición roja de la raíz se recomienda la erradicación de las plantas enfermas.

La mancha foliar bacteriana o bacteriosis, causada por Xanthomonas campestris es la principal enfermedad bacteriana del guaraná y puede ser controlada con fungicidas cúpricos al 0,3%.

Los trips (Lotaris adisi) son los vectores de la enfermedad del superbrotamiento y son indicados como la principal plaga, atacando hojas jóvenes y brotes florales. El control de este insecto es efectuado por medio de pulverizaciones con Ethion, Cyntrolone o Thichlorfon en la dosis de O,I%.

Tecnología de cosecha y poscosecha:

La cosecha es efectuada manualmente, con auxilio de tijeras, cortando los racimos cuando tienen la mitadde los frutos en inicio de deshicencia.

Después de la cosecha los frutos son amontonados en galpones aireados durante dos a tres días y, posteriormente, se extrae la semilla manual o mecánicamente. En seguida se lavan en agua para remover el arilodio y se tuestan o se secan al sol.

El proceso de tostado es efectuado en hornos de barro o de metal, colocando las semillas en camas con un máximo de 10 cm de altura y quedan sometidas a la acción del calor blando por un período de cuatro a cinco horas, debiendo ser revueltas a intervalos regulares hasta alcanzar 8 a 10% de humedad.

Para secar al sol pueden utilizar secadores rústicos, con cobertura de plástico transparente y un depósito de madera, en el que son colocadas las semillas. El tiempo de permanencia de las semillas en estos secadores depende de la intensidad de la radiación solar, variando normalmente entre cuatro y cinco días.

III. PERSPECTIVAS DE MEJORAMIENTO DEL CULTIVO

Diversidad genética:

Presenta amplia variabilidad para las características de producción de semilla, período de producción, porte y arquitectura de planta, forma y tamaño de los frutos, peso de las semillas, contenido de cafeína, capacidad de enraizamiento de las estacas, velocidad de germinación de las semillas y resistencia a enfermedades. Paullinia cupana var. typica, no es cultivada y se distingue fácilmente de P. cupana var. sorbilis, por no presentar zarcillos y por el tamaño de los frutos que llegan a ser dos a tres veces más grandes.

Disponibilidad de recursos genéticos:

En el CPATU/EMBRAPA, en Belém, Pará, Brasil, se encuentra un banco activo de germoplasma con 172 progenies y 69 matrices clonadas, con un total de 719 plantas. El CPAA/EMBRAPA, en Manaus, tiene una colección con 148 clones. El CEPLAC, en Bahia, formó una colección representada por 22 progenies de medios hermanos. El Instituto Agronómico de Campinas (IAC), en Campinas, São Paulo, también dispone de algunos accesos en sus campos experimentales. El INIA, Perú, dispone de una colección de los diez mejores ecotipos cultivados en la zona de Pucallpa.

Prioridades de investigación:

El principal aspecto que debe ser considerado para el mejoramiento genético del guaraná es la selección de plantas con productividad de 4 kg de semilla seca por año, con resistencia a la antracnosis y a la mancha negra y con maduración uniforme de los frutos. También deben efectuarse estudios consistentes sobre la respuesta al abonamiento en diferentes tipos de suelos que, con toda seguridad, contribuirán a aumentar fuertemente la productividad.

IV. UTILIZACION Y COMERCIALIZACION

Formas de utilización:

El principal uso de las semillas es en la elaboración de refrescos o bebidas gaseosas con sabor de guaraná, utilizándose 200 g del producto natural por cada 100 litros del refresco. Sin embargo, esta no es la única forma como se consume el producto, existiendo un mercado sustancial para la forma de mazos (bastones), polvos y jarabes.

Composición química y valor nutricional:

Entre los productos vegetales estimulantes, el guaraná es el que presenta mayor contenido de alcaloides, principalmente de cafeína, superando a productos como el café, cacao, té, mate y cola (Cuadro 26).

En promedio, el nivel de cafeína se sitúa en el rango de 4,3 a 4,7%. Existen matrices cuyas semillas presentan tenores de cafeína desde 3,6% hasta 1O,O%.

Cuadro 26

Contenido de cafeína y teobromina en semillas de guaraná y en otros productos de origen vegetal (Castro, 1992).

En el Cuadro 27 se encuentra la composición química de las semillas de guaraná. Estas son ricas en fibra y tienen diversos constituyentes que actúan como estimulantes del organismo.

Cuadro 27

Composición química de 100 g de semillas de guaraná. (Vasconcelos et al. 1976).

Aspectos de agroindustrialización a pequeña escala:

Para obtener guaraná en polvo, las semillas tostadas y desprovistas de tegumento, son trituradas en pilones de madera o en molinos de metal, hasta ser reducidas a polvo fino. Este producto, usado tradicionalmente en la región amazónica brasileña, tiene sabor amargo y no es soluble en agua.

El guaraná en mazo o bastón, es una de las formas más tradicionales que el producto es presentado en la Amazonia del Brasil. Para su obtención, las almendras tostadas se trituran en pilones de madera, agregando luego, pequeñas cantidades de agua, para después ser golpeadas nuevamente, hasta obtener una masa de consistencia pastosa. Una vez obtenida la masa ésta es moldeada manualmente, en forma de cilindros de 20 cm de largo por 3 a 4 cm de diámetro. Los mazos o bastones así obtenidos son ahumados a fuego blando, hasta que secan y adquieren la coloración típica. El período de ahumado varía entre 30 y 60 días, en los que el mazo adquiere consistencia pétrea. El producto tiene un alto poder de conservación, especialmente si es almacenado en un lugar seco.

En cambio, para obtener el extracto de guaraná, las almendras son quebradas y sumergidas en una solución hidroalcohólica (47% alcohol y 53% agua), por un período mínimo de tres días, siendo filtrado posteriormente.

La bebida gaseosa o refrigerante de guaraná solamente es obtenida en pequeña escala industrial.

Importancia económica potencial y comercialización:

El consumo de bebidas gaseosas con sabor a guaraná, solamente en Brasil 9 sobrepasa los mil millones de litros por año. Estas bebidas contienen el equivalente entre 0,02 y 0,2% de almendras en su composición final. Existen perspectivas para que el producto expanda a otros países sudamericanos y a EE.UU.

Hasta hace poco tiempo, el consumo de guaraná en polvo o en cápsulas, tenía gran receptividad del público norteamericano, basado en las versiones sobre las propiedades estimulantes del producto, por lo que éste era un mercado en expansión. Sin embargo, las restricciones impuestas recientemente por el gobierno de EE.UU. para la comercialización de productos con alto contenido de cafeína, han limitado bastante el consumo de estas formas de guaraná en ese mercado.

V. FUENTES DE INFORMACION

Literatura:

Carvalho, J. E. U. de. A cultura do guaranazeiro. Revista Brasileira de Fruticultura, Cruz das Almas, 9 (Nº extra), p: 61-65.

Carvalho, J. E. U. de.; F. J. C Figueirédo; D. A. C. Frazáo y R. Pde Oliveira. 1980. Germinagáo de sementes de guaraná provenientes de diferentes épocas de colheita. Belém: EMBRAPA-CPATU. (EMBRAPA-CPATU. Boletim de Pesquisa, 17). 12 p.

Carvalho, J. E. U. de.; D.,A. C. Frazão; E J. C. Figueirêdo y R. P. de Oliveira. 1982. Conservagáo da viabilidade de sementes de guaraná (Paullinia cupana var. sorbilis (Mart.) Ducke). Belém: EMBRAPA-CPATU, 1982. (EMBRAPA-CPATU. Circular Técnica, 35). 12 p.

Carvalho, J. E. U. de; A. K. Kato y E J.C. Figueirêdo. 1983. Efeito do estagio de maturagáo do fruto sobre a qualidade da semente do guaranazeiro. Belém: EMBRAPA-CPATU, 1 lp. (EMBRAPA-CPATU, Circular Técnica, 43).

Castro, N. H. Campos de. Cultura do guaranazeiro. 1992. Belém: EMBRAPACPATU. (EMBRAPA-CPATU.Documentos, 68). 71 p.

Cavalcante, P. B. 1991. Frutas comestíveis da Amaz6nia. Belém: Ed. CEJUP. 279 p.

Vasconcelos, A.; J.C. Nascimento y A.L. Maia. 1976. A cultura do guaraná. p: 65-71. In: Simposio Internacional Sobre Plantas de Interés Económico de la Flora Amazónica., 1972, Belém. IICA - Tropicos. (Informes de Conferencias, Cursos y Reuniones, 93).

HUITO

Genipa americana L.

Origen :

Norte de América del Sur.

Distribución :

América tropical.

Descripción :

Arbol de 10 a 15 m de altura y 30 a 80 cm de diámetro.

Adaptación :

Clima cálido y lluvioso, tolera tres meses de período seco, suelo bien drenado, pero tolera inundación temporal.

Formas de utilización :

Pulpa de fruta fresca o cocinada, elaborada en jugos, helados, dulces, jarabes, vino y licores macerados.

Fruto verde para obtener tintes para teñir telas y para tratamiento del cutis.

Madera para mango de herramientas, hormas de zapatos, molde para maquinarias y objetos domésticos.

En medicina popular.

l. DESCRIPCION Y HABITAT

Nombre científico y familia:

Genipa americana L. RUBIACEAE.

Nombre común:

"Huito", "huitu", "wito","witu", "jagua", "totumillo", "bilito", "cafecillo denta", "caruto", "xagua", "mayagua", "guaricha", "maluco", "nané", "guayatil", "carcarutoto", "maluco", "crayo" (español), "jenipapo", "genipapo", "mandipa" (portugués), "marmaladebox", "genipap" (inglés), "genipayer" (francés), "taproepa","tapoeripa" (holandés).

Sinónimos aceptados:

Genipa excelsa Krause, Genipa oblongifolia R&P.

Descripción botánica:

Arbol de 10 a 15 m, a veces hasta 20 m de altura y 30 a 80 cm de diámetro. Tronco generalmente recto, corteza áspera, bien adherida, color verde plomizo, ramificaciones verticiladas abundantes, con las ramas inferiores generalmente horizontales. Las hojas concentradas en el ápice de las ramas, oblongo lanceoladas, opuestas, glabras en ambas caras; las estípulas son interpeciolares triangulares grises con el ápice muy agudo. Lado superior verde oscuro y brillante. Flor con cáliz tubuloso color verde y corola color blanco a amarillo, vellosa, ligeramente perfumada.

El fruto es una baya subglobosa a ovoide, de 10 a 12 cm de largo por 7 a 9 cm de diámetro, pesando entre 200 y 400 g, con restos del tubo del cáliz en el ápice. Cáscara amarillo crema a marrón, con puntuaciones marrón oscuras. Pericarpio pardo amarillo, esponjoso, cerca de 1,5 cm de espesor; pulpa jugosa, agridulce, astringente, con numerosas semillas achatadas color crema; el pericarpio y la pulpa son aromáticos.

Origen:

Aunque se halla distribuido en toda la América tropical y el Caribe, probablemente se haya originado en el norte de América del Sur, donde se encuentra tanto en estado silvestre como cultivado, desde tiempo precolombino.

Ecología y adaptación:

Se observa distribuido en toda la América tropical. En la Amazonia se le encuentra tanto en la selva alta o piedemontes amazónicos, como en la selva baja o llano amazónico. Crece tanto en suelos con buen drenaje, como en los suelos de los bosques ribereños inundados periódicamente por aguas claras. Desarrolla en zonas con precipitación pluvial entre 1,500 y 4,500 o más mm/año y con temperaturas medias anuales entre 22 y 30'C.

La gran dispersión por América tropical puede deberse al hecho que es una de las primeras especies utilizadas por los nativos para teñir su cuerpo, tejidos y objetos diversos.

II. LA PLANTA Y SU CULTIVO

Métodos de propagación:

La propagación por semilla es el método más utilizado. También se puede propagar por injerto, utilizando el injerto en escudo, con prendimiento superior a 60%, y con el mismo fruto como portainjerto.

Las semillas no tienen comportamiento definido, siendo intermedias entre las ortodoxas y las recalcitrantes. Cuando son sembradas inmediatamente después de la extracción y procesamiento (el contenido de humedad está en 40%), presentan un alto poder germinativo, siendo la germinación rápida y uniforme (Figura 22). La reducción del contenido de humedad de la semilla hasta alrededor de 10% no compromete la viabilidad, pero sí induce dormancia y las semillas requieren más tiempo para germinar. Con reducción del contenido de humedad a 5% o menos, las semillas pierden completamente su poder germinativo. La germinación es de tipo epigea.

Figura 22

Los frutos contienen un promedio de 296 semillas, que son pequeñas, con peso de 75 g por 1,000 semillas.

Las semillas germinadas son sembradas en bolsas de plástico conteniendo una mezcla de 20% de estiércol descompuesto, 20% de aserrín y 60% de tierra. Estas plantas son manejadas en vivero de manera similar a otros frutales y después de seis meses estarán listas para trasplantarse a campo definitivo.

La propagación por injerto es poco utilizada, pero, tiene la ventaja de reducir el período de juventud de la planta y éstas entran en producción con menor edad, además de garantizar la transferencia de las características genéticas de la planta escogida.

Prácticas culturales y producción:

Desarrolla mejor en suelos profundos, con buena humedad, aunque también prospera en zonas con tres a cuatro meses de estación seca.

Los frutos cuando están inmaduros son de color gris, frecuentemente manchados con líquenes. En la maduración, el color cambia a café amarillento o café rojizo y la pulpa se ablanda. La planta fructifica una vez al año entre noviembre y marzo y algunas veces de abril a agosto. La producción por árbol es variable. Parece ser que requiere poda de producción, para eliminar las ramas viejas, ya que los frutos aparecen en las ramas nuevas.

En suelos de baja fertilidad en Belém, Pará, la producción de plantas con ocho años de edad, solamente llega a 18,0 kg/planta. Esta producción se distribuye en todos los meses del año, concentrándose en los meses de diciembre y enero (Figura 23).

Figura 23

Principales plagas y enfermedades.

Control:

No se conocen plagas ni enfermedades de este frutal, que no se encuentre cultivado en escala comercial.

Tecnología de cosecha y poscosecha:

El fruto debe cosecharse cuando empieza a madurar, apreciándose en el cambio de color y frecuentemente por el aroma de las frutas maduras. La fruta debe consumirse bien madura, que se conoce cuando el pericarpio está suave. Las frutas maduras toleran bien el transporte, debido a que el pericarpio esponjoso y la cáscara son bastante resistentes al manipuleo.

III. PERSPECTIVAS DE MEJORAMIENTO DEL CULTIVO

Diversidad genética:

Existe buena diversidad genética, evidenciada por la forma de los frutos, la presentación de las flores (aisladas o en pequeñas inflorescencias y el grosor del pericarpio y de la pulpa).

Disponibilidad de recursos genéticos:

No se tiene referencia de la disponibilidad de germoplama en instituciones en la Amazonia. La especie ha sido llevada a otras zonas tropicales de América, donde puede existir germoplasma mejorado.

Prioridades de investigación:

No se tienen cultivos comerciales de huito. Las frutas se colectan de las plantas existentes en el bosque o en los huertos caseros. Algunos de los aspectos a investigar son los métodos de propagación asexual, selección de variedades con mejor productividad y características industriales (contenido de colorante, taninos, etc), precocidad y regularidad de la fructificación y utilización de la madera, entre otros.

IV. UTILIZACION Y COMERCIALIZACION

Formas de utilización:

Los pobladores de la Amazonia comen la pulpa del fruto en forma natural o adicionándole azúcar o cocinada con azúcar para producir dulce de huito, que se come como postre. En toda la Amazonia, así como en la región cacaotera de Bahía, se prepara un licor macerado en aguardiente ("huitochado", "licor de jenipapo", "jenipapada"), también se utiliza en la elaboración de refrescos, vinos y jarabes.

El fruto verde provee un jugo amarillo que gradualmente se oscurece hasta tomarse azul oscuro y casi negro, muy usado por los nativos en sus pinturas o para teñirse el cabello y el cuerpo. Del fruto preparan un jarabe antibronquial para los casos de asma. El "huitochado" es recomendado para el reumatismo. Los nativos cocinan la fruta y las semillas y utilizan el líquido para reducir la inflamación de las membranas mucosas respiratorias. Asimismo, la pulpa de la fruta tierna es empleada como anestésico dental.

La cáscara del fruto contiene 0,75% de taninos y es astringente. La fruta verde tostada en hojas de plátano produce el tinte oscuro que se usa para colorear telas y para colorear la piel como protector contra la picadura de mosquitos (dura ocho días). Al desaparecer el tinte, el cutis queda más limpio, blanco y librede erupciones y barritos.

La madera de color blanco marfil tiene múltiples usos y es fácil de trabajar. Se utiliza en la fabricación de utensilios domésticos de hormas para zapatos, raquetas, collares de madera, mango de herramientas en fundición, en la preparación de moldes para maquinaria y otros objetos de uso doméstico.

Composición química y valor nutricional:

Se han identificado los siguientes compuestos en el fruto del huito: genipina, manitol, taninos, metil-eteres, cateina, hidantoina y ácidos tánicos. La genipina es un monoterpenoide que produce coloración negra no solamente con la proteína de la piel sino con varios aminoácidos. La composición de la pulpa se puede apreciar en el Cuadro 28.

Cuadro 28

Valor nutritivo de 100 g de pulpa de huito.

Aspectos de agroindustrialización a pequeña escala:

La industrialización es posible para la preparación de jarabes, bebidas alcohólicas y utensilios de madera, existiendo experiencia de preparación artesanal. Asimismo, es posible la industrialización para obtener tinte natural de color azul violeta, por lo que se debe mejorar la tecnología nativa existente. En este aspecto, el CPATU/EMBRAPA está investigando el aprovechamiento de esta fuente de colorante natural. La jalea de huito se prepara con los componentes indicados en el Cuadro 29.

Cuadro 29

Composición de la jalea de huito

La jalea así procesada presenta buena estabilidad hasta 150 días, aunque se produce un oscurecimiento gradual del producto con el tiempo de almacenaje.

Importancia económica potencial y comercialización:

El potencial de utilización del huito es bastante amplio. Su habitat natural es la Amazonia, sin embargo, ya ha sido adaptado a otras localidades de América tropical. Por este motivo, se debe tener cuidado al cuantificar en un potencial mercado externo a la región amazónica, puesto que la especie también puede ser cultivada en otras regiones tropicales.

V. FUENTES DE INFORMACION

Literatura:

Brako, L. y J.L. Zaruchi. 1993. Catálogo de las Angiospermas y Gimnospermas del Perú. Missouri Botanical Garden. St. Louis, Missouri, EE.UU. 1 286 p.

Calzada, J. 1980. 143. Frutales nativos. Lib. El Estudiante. Lima, Perú. 21 0 p.

Cavalcante, P.V. 1991. Frutas comestiveis da Amaz6nia. 5a ed. Edições CEJUP,Museo Paraense E. Goeldi,Belém. 279 p.

Collazos, C., P. L. White., H. S. White et al. 1975. La composición de los alimentos peruanos. Instituto de Nutrición. Minist. de Salud. Lima. 35 p.

Duke, J.A. y R. Vásquez. 1994. Amazonian ethnobotanical dictionary. CRC Press. Boca Raton, Florida. 215 p.

Ruiz, J.1993. Alimentos del bosque amazónico: Una alternativa para la protección de los bosques tropicales. UNESCO /ORCYT. Montevideo. 225 p.